[发明专利]一种O型口蹄疫病毒多肽与SLA-2重链、轻链β2m复性结晶的方法有效
申请号: | 201510961939.9 | 申请日: | 2015-12-18 |
公开(公告)号: | CN105461811B | 公开(公告)日: | 2018-12-18 |
发明(设计)人: | 高凤山 | 申请(专利权)人: | 大连大学 |
主分类号: | C07K19/00 | 分类号: | C07K19/00;C07K1/18;C07K1/14;C12N15/70 |
代理公司: | 大连八方知识产权代理有限公司 21226 | 代理人: | 朱秀芬 |
地址: | 116622 辽宁*** | 国省代码: | 辽宁;21 |
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摘要: | 本发明属于生物技术领域,具体涉及到一种O型口蹄疫病毒多肽与荷包猪SLA‑2重链、轻链β2m复性、结晶的方法。本发明以荷包猪为例,构建SLA‑2胞外部区原核表达载体,转入宿主菌获得表达蛋白及其包涵体,通过稀释复性法使SLA‑2、Hu62多肽与sβ2m体外正确结合折叠,再利用分子筛分离纯化复性蛋白质。本发明采用了原核表达系统,高表达了荷包猪的SLA I分子的重链胞外区域和轻链,具有快捷、直观等优点,SLA‑2‑HB‑Hu62‑sβ2m结果获得高质量的单晶,晶体分辨率达到,SLA‑2‑HB‑Hu62‑sβ2m呈现非对称的双分子结构,揭示其可能有两种构象。 | ||
搜索关键词: | 一种 口蹄疫病毒 多肽 sla 复性 结晶 方法 | ||
【主权项】:
1.一种O型口蹄疫病毒多肽与荷包猪SLA‑2重链、轻链β2m复性、结晶的方法,其特征在于,具体步骤如下:(1)、引物设计与合成依据荷包猪SLA‑2全基因编码序列,分别设计扩增其胞外区的上游引物和下游引物:上游引物pHB21F:5′‑GGAATTCCATATGGGCCCGCATTCCCTGAGCTATTCTTAC‑3′,Nde I限制性酶切位点CA/TATG;下游引物pHB‑21R1:5′‑AGTCTCGAGTTAGTCCCATCTCAGGGTGAGGGGCTCCTGC‑3′,Xho I限制性酶切位点CT/CGAG;(2)、多肽的合成以O型口蹄疫病毒设计了Hu62口蹄疫病毒多肽,序列为ALLRTATYY;(3)、SLA‑2‑HB胞外区表达载体的构建用pHB21F/pHB‑21R1作为引物对,以荷包猪SLA‑2‑HB01/pMD18‑T全基因重组质粒为模板,扩增荷包猪SLA‑2胞外区部分,PCR产物5′端带有Nde I限制性酶切位点CA/TATG,3′端带有Xho I限制性酶切位点CT/CGAG,建立如下PCR反应体系,总体积为50μL:包括2.5mmol/L dNTPs 4μL,25pmol/μL上游引物1μL,25pmol/μL下游引物1μL,30ng SLA‑2全基因组质粒1μL,10×ExTaq Buffer 5μL,5U/μL ExTaq酶0.5μL,灭菌水37.5μL;PCR反应条件为:94℃5min;94℃30s,56℃45s,72℃1.5min,共30cycles;72℃10min;4℃保存;PCR产物经切胶回收,并经过Nde I和Xho I双酶切后,与经过同样处理的pET‑21a(+)空载体进行连接,转化BL21感受态细胞,挑取阳性克隆培养,提取质粒进行双酶切鉴定筛选阳性克隆,并测序;(4)、诱导表达、包涵体提取及SDS‑PAGE电泳检测表达蛋白测序正确的SLA‑2重链阳性克隆菌与轻链sβ2m表达菌在有Amp抗性的固体LB平板上划线,平板在37℃培养12小时,挑取单菌落至装有3mL LB+3μL浓度为100mg/mL的Amp培养基的试管中培养10h,把培养好的菌液50μL接入装有50mL LB液体培养基的锥形瓶内,培养基内加入50μL的Amp,锥形瓶37℃恒温振荡过夜培养,用大三角瓶配制2L的LB液体培养基,121℃20min灭菌,将过夜培养的菌往大三角瓶内按1:100的比例接种,并加入2mL浓度为100mg/mL的Amp,在大摇床内37℃恒温震荡培养2个小时测OD值,直至OD为0.5时加入2mL浓度为1mol/L的IPTG进行诱导,37℃培养5h后收菌,将培养的菌转入500mL的离心杯中,4℃下,转速为6000rpm,离心15min后收菌,倒掉上清只留菌体沉淀,收菌后,在低温下,用60ml 1×PBS的悬浮液悬浮菌体,悬浮液含60μl DTT,终浓度为1‰,然后超声裂解,每一次超声6S,间隔12S,重复198次,250W,中间看是否有沉淀,有则搅拌,之后继续超声;4℃下,转速为16000rpm,离心15min后,用玻棒将细菌碎片拨掉,washing buffer共100mL,加入100μL DTT,至终浓度为1‰,洗3次,每次洗后超声4S,间隔10S,重复25次,250W,超声后转速16000rpm,离心15min,washing buffer洗涤,去除细菌碎片;称重,转速16000rpm,离心15min,去上清,沉淀用60mL resuspension buffer,加入60μL DTT,至终浓度为1‰,悬浮,转速16000rpm,离心15min;按30mg/ml用dissolution buffer溶解,dissolution buffer中加入DTT至终浓度为1%,4℃搅拌溶解过夜,转速16000rpm,离心15min,倒出上清或分装成1ml/管,于‑20℃或‑80℃保存备用;(5)、荷包猪重链SLA‑2‑HB、轻链sβ2m及其口蹄疫病毒表位多肽的体外结合荷包猪重链SLA‑2‑HB、轻链β2m与口蹄疫病毒Hu62表位肽在体外结合:1)稀释法复性蛋白质①配制500mL refolding buffer,配方100mmol/L Tris,pH8.0,400mmol/L L‑Arg HCl,2mmol/L EDTA,5mmol/L GSH,0.5mmol/L GSSH,复性液预冷后加入0.5mmol/L PMSF,4℃缓慢搅拌至其完全溶解混匀,②用5mL或10mL注射器将溶解后的包涵体加入注射器内,使之一滴一滴的往refolding buffer内滴下,慢慢搅拌8‑10小时,在4℃条件下,先加轻链β2m,再加多肽,最后加荷包猪重链SLA‑2‑HB,荷包猪重链SLA‑2‑HB分三次加,按摩尔比,荷包猪重链SLA‑2‑HB:轻链β2m:多肽=1:1:3,③复性后,用浓缩杯浓缩样品换液,缓冲液为分子筛buffer,再转到浓缩管内浓缩,如果复性体系小的话可直接用浓缩管浓缩换液,复性后如果复性液变得浑浊,4℃条件下离心去除沉淀后再浓缩;2)蛋白质浓缩将复性蛋白质体系转入到500mL的离心管内,转速6000rpm,4℃下离心15min,去沉淀,在4℃冷库将上清转入到350mL的搅拌式超滤装置中,浓缩杯底部事先装好10kDa Millipore Centricon蛋白截留膜,利用N2进行加压浓缩,当浓缩至30mL时加入事先预冷抽滤好的分子筛buffer至体积150mL,分子筛buffer为20mmol/L Tris,pH8.0,50mmol/L NaCl,继续浓缩重复上述步骤,最后浓缩至30mL,将溶液转移至30mL离心管中,转速16000rpm,4℃下离心15min,将上清转到超滤浓缩管中进一步浓缩至4mL,将浓缩好的蛋白换到EP管中,转速13300rpm,4℃下离心10min,换管去沉淀;再重复上述步骤一次,检查是否有沉淀,若有继续重复一次,若没有沉淀,冰上放置以备上样用,3)分子筛和SDS‑PAGE鉴定多肽结合分子筛buffer洗涤AKTA的上样泵,之后再用分子筛buffer平衡凝胶柱Superdex 200pg HiLoad 16/600预装柱,将样品4℃下,转速12000rpm,离心10min,去气泡以备上样,以1mL/min的流速运行,按OD280,mAU>20的标准进行收集,定量每管收集1.8mL,收集峰值处的样品进行制备蛋白样品,然后SDS‑PAGE鉴定是否结合,将跑胶显示为复性的蛋白质收集后浓缩,再过阴离子柱Resource Q进一步纯化复性蛋白质,首先用A液、B液交替冲洗Resource Q,除去原先柱子上所挂杂蛋白,后用A液平衡柱子,将复性蛋白质浓缩,离心去沉淀,步骤同分子筛,上样10mL后,用B液清洗结合在阴离子柱上的蛋白,40分钟均匀拉梯度至25%B液,收集OD280在20mAU以上的蛋白质,SDS‑PAGE再次鉴定为复性的蛋白质,收集浓缩后以备点晶体用,其中,A液为10mmol/L Tris pH8.0,10mmol/L NaCl、B液为10mmol/L Tris pH8.0,1mol/L NaCl;(6)、SLA‑2‑HB‑Hu62‑sβ2m复合物蛋白质结晶①将纯化得到的复性蛋白质复合物经分子筛buffer换液,并用10kDa的超滤浓缩管浓缩至100μL,用BSA法测定蛋白质浓度,分别稀释成7.5mg/mL和10mg/mL的浓度,②利用Index1‑48,Index49‑96,PEG/Ion Ⅰ,PEG/Ion Ⅱ,Crystal Screen Ⅰ,Crystal Screen Ⅱ,PEGRx Ⅰ,PEGRx Ⅱ试剂盒,利用座滴法于4℃和18℃分别进行蛋白复合物的晶体筛选,③在48孔的座滴板中,每孔加入120μL池液,在晶体孔中加入1μL蛋白和1μL池液,使其混合,用胶带将48孔板密封,放入晶体生长柜中,一周后,用低倍显微镜观察是否有晶体长出,并做好标记,④如果有晶体生长,将晶体拍照保存,送到X光机上进行衍射鉴定,如果晶体是蛋白晶体且衍射效果好,可以直接收集晶体的数据,如果衍射的效果不佳,则需要重新筛选晶体生长条件或者优化,⑤优化的条件是通过改变初筛条件中的沉淀剂,缓冲pH,离子浓度或者添加剂的方法得到,得到了质量好的蛋白晶体后,重复上述步骤④。
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