[发明专利]诱导分化hPSCs为谷氨酰胺能神经元的方法有效

专利信息
申请号: 201610300819.9 申请日: 2016-05-09
公开(公告)号: CN105969733B 公开(公告)日: 2019-04-16
发明(设计)人: 刘妍;曹诗颖;胡瑶;陈成;徐敏 申请(专利权)人: 南京医科大学
主分类号: C12N5/0793 分类号: C12N5/0793
代理公司: 南京苏高专利商标事务所(普通合伙) 32204 代理人: 李昊
地址: 210029 *** 国省代码: 江苏;32
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摘要: 发明公开一种诱导分化hPSCs为谷氨酰胺能神经元的方法,包括以下步骤:1)将hPSCs贴壁培养,待形成边缘光滑,大小均一,内部致密的克隆后消化制成拟胚体,在神经诱导培养液中悬浮培养;2)在分化第1天加入腹侧化因子SHH的抑制剂;3)在分化第7天进行贴壁,第10天得到神经管样细胞结构;4)在分化第16天将形成的神经管样细胞结构吹下,第17天将形成球状神经前体细胞;5)在分化第20天将部分神经前体细胞贴壁,得到大脑皮质神经元;6)在分化第28天将剩余神经前体细胞贴壁,加入神经营养因子培养,在分化90天后,获得谷氨酰胺能神经元。
搜索关键词: 诱导 分化 hpscs 谷氨酰胺 神经元 方法
【主权项】:
1.一种诱导分化hPSCs为谷氨酰胺能神经元的方法,其特征在于,包括以下步骤:1)将hPSCs贴壁培养,待形成边缘光滑,大小均一,内部致密的克隆后消化制成拟胚体,在神经诱导培养液中悬浮培养;2)在分化第1天加入腹侧化因子SHH的抑制剂;3)在分化第7天进行贴壁,第10天得到神经管样细胞结构;4)在分化第16天将形成的神经管样细胞结构吹下,第17天将形成球状神经前体细胞;5)在分化第20天将部分神经前体细胞贴壁,得到大脑皮质神经元;6)在分化第28天将剩余神经前体细胞贴壁,加入神经营养因子培养,在分化90天后,获得谷氨酰胺能神经元;所述步骤1)将hPSCs贴壁培养,待形成边缘光滑,大小均一,内部致密的克隆后消化制成拟胚体,在神经诱导培养液中悬浮培养具体为:将hPSCs贴壁培养于在室温下用基质胶Vitronectin提前2小时包被过的培养皿中;hPSCs所用培养液为Essential 8,由体积比为50∶1的Essential8TM Basal Medium与Essential 8TM Supplement 50X配制而成;hPSCs在培养皿中增殖为边缘光滑,大小均一,内部致密的克隆后,加入1ml 1Uml1Dispase于37℃,5%CO2的孵箱中孵育2分钟,移至显微镜下观察,克隆边缘发亮,并微微卷起时,将Dispase吸除;用DMEM/F12轻洗细胞,10‑20s后吸走,再加入DMEM/F12轻轻将克隆吹下,一边吹一边将已吹下的克隆从液体中吸出转移至15ml离心管中;将装有细胞和DMEM/F12的离心管离心,800rpm,1min;吸除上清,将管底的细胞转移至细胞培养瓶,换上神经诱导培养液Neural induction medium,将细胞制成拟胚体,在神经诱导培养液中悬浮培养,其中,神经诱导培养液NIM为DMEM/F12培养基,NEAA,N2以体积比98∶1∶1配制而成;所述步骤2)在分化第1天加入腹侧化因子SHH的抑制剂,具体为:分化第1天在神经诱导培养液中加入腹侧化因子SHH的抑制剂Cyclopamine,浓度为2‑20μM,并且在分化第1‑3天时加入体积为培养 液体积5%的血清替代物KOSR,分化第1天至分化第4天,每天半换液,4天之后,隔天半换液,更换的培养液均为加入Cyclopamine的神经诱导培养液,持续至分化第25天;所述步骤3)在分化第7天进行贴壁,第10天得到神经管样细胞结构具体为:分化第7天时把拟胚体从培养瓶吸出置于离心管中,用头轻吹打2‑3次;待细胞自然沉降到管底后,吸走上清,留少量培养基,用枪将拟胚体吸出,置于细胞培养皿中,每个培养皿中大约含50个拟胚体,细胞培养液为1.5ml,由90%NIM+10%FBS配制而成;10小时后更换为加入Cyclopamine的神经诱导培养液;所述步骤4)在分化第16天将形成的神经管样细胞结构吹下,第17天将形成球状神经前体细胞,具体为:分化第16天,用1ml的枪将形成神经管样细胞结构吹下,转移至15ml离心管中自然沉降,弃上清,将管底细胞转移至细胞培养瓶中,培养液为加入Cyclopamine的神经诱导培养液,并在其中加入B27和Rock inhibitor;体积比为98∶2∶0.01;分化第17天,细胞将形成球状神经前体细胞;所述步骤5)在分化第20天将部分神经前体细胞贴壁,得到大脑皮质神经元具体为:分化第20天将神经前体细胞贴壁分化;在贴壁提前两小时在室温下用Matrigel包被用Poly‑l‑ornithine hydrobromide提前处理过的玻片,80ul/片;用1ml的枪吸出少量神经前体细胞于1.5ml的离心管中,使其自然沉淀,弃上清,加入1ml的TrypLE酶,置于37℃的孵箱中孵育6min;吸出TrypLE,加入1mlDMEM/F12重悬,待神经前体细胞自然沉降到管底后吸去上清;再加入500ulDMEM/F12,用200ul的枪头逐级吹打细胞;吸取10ul进行细胞计数,以4x104个/ml的密度种于玻片上,每个玻片100ul,2hours后补液至500ul,培养液为NIM与B27,体积比为NIM∶B27=98∶2;每隔一周半换液;剩余的神经前体细胞继续在培养瓶中培养,所用培养液仍然为含有Cyclopamine的神经诱导培养液;在分化第26天时,将Cyclopamine从神经诱导培养液中撤出,使用NIM神经诱导培养液;所述步骤6)在分化第28天将剩余神经前体细胞贴壁,加入神经营养因子培养,在分化90天后,获得谷氨酰胺能神经元具体为:在分化第28天将剩余神经前体细胞贴壁分化,在贴壁前两小时在室温下用Matrigel包被用Poly‑1‑omithine hydrobromide提前处理过的玻片,80ul/片;用1ml的枪吸出少量神经前体细胞于1.5ml的离心管中,使其自然沉淀,弃上清,用10ul的枪头将神经前体细胞吸出,按10个/玻片的密度种于玻片上,每个玻片100ul,2hours后补液至500ul,培养液为NIM,包含2%B27和神经营养因子10ng ml‑1BDNF、1μM CAMP,每隔一周半换液,培养至第90天。
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