[发明专利]一种小鼠体细胞核移植方法在审
申请号: | 201710461970.5 | 申请日: | 2017-06-19 |
公开(公告)号: | CN107099553A | 公开(公告)日: | 2017-08-29 |
发明(设计)人: | 李光鹏;杨磊;刘雪霏 | 申请(专利权)人: | 内蒙古大学 |
主分类号: | C12N15/877 | 分类号: | C12N15/877;A61D19/04;A01K67/027 |
代理公司: | 北京华仲龙腾专利代理事务所(普通合伙)11548 | 代理人: | 李静 |
地址: | 010000 内蒙古自*** | 国省代码: | 内蒙古;15 |
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摘要: | 本发明公开了一种优化的小鼠体细胞核移植方法,利用卵丘细胞、胎儿成纤维细胞和胚胎干细胞这3种细胞构建了重构胚,并比较了这3种重构胚在不同激活液中的激活效率,在不同溶液中的发育效率,采用不同胚胎移植方法的妊娠效率;得出,无钙KSOM激活液是通用的高效激活液,激活效率在93.5%左右;KSOM‑AA培养液适合于卵丘和胚胎干细胞重构胚的体外培养,胎儿成纤维重构胚的最佳培养液为αMEM培养液;当重构胚体外发育至2‑细胞时期,经输卵管双侧移植,每侧移植15枚胚胎可高效获得核移植动物;本发明的方法能提高重构胚卵裂率和囊胚发育率、克隆动物出生率和成活率,继而提高从重构囊胚中获得胚胎干细胞的成功率。 | ||
搜索关键词: | 一种 小鼠 体细胞 移植 方法 | ||
【主权项】:
一种小鼠体细胞核移植方法,其特征在于,包括以下步骤:1)选择实验动物:选用B6D2F1雌雄小鼠提供稳定的卵母细胞;2)配制细胞培养液:2.1)饲养层细胞培养液:500mL,组成成分为:DMEM培养液445mL、牛血清e)50mL、L‑谷氨酰胺5mL;2.2)胚胎干细胞养出培养液:100mL,组成成分为:DMEM培养液80mL、血清替代物15mL、青链霉素混合液1ml、L‑谷氨酰胺1ml、非必须氨基酸1ml、胚胎干细胞核苷酸1ml、β巯基乙醇100μl、白血病抑制因子10μl;2.3)冻存液:500mL,组成成分为:DMEM培养液350mL、血清50mL、L‑谷氨酰胺100mL;配完后10mL分装,‑20℃保存,有效期12个月,用于细胞的冻存;2.4)丝裂霉素C:100X丝裂霉素C的配置与储存均在生物安全柜中进行,用2mL注射器吸取2mL的血清注入2mg丝裂霉素C棕色药瓶中,充分颠倒混匀后配置成1mg/mL浓储液,开瓶盖,将溶解后的丝裂霉素C分装,存于‑20℃中,丝裂霉素C的工作浓度为10μg/mL。3)配制胚胎培养液:3.1)浓缩液:3.1.1)HCZB浓储液:500mL;组成成分为:超纯水495ml、氯化钠2380mg、氯化钾180mg、7水硫酸镁145mg、乙二胺四乙酸二钠20mg、乳酸钠2.65mL、葡萄糖500mg、磷酸二氢钾80mg;3.1.2)10ml氯化钙100X浓储液:由0.2g二水氯化钙和10ml超纯水配制而成;3.1.3)10ml氯化锶100X浓储液:由2.666g六水氯化锶和10ml超纯水配制而成;3.1.4)20ml谷氨酰胺100X浓储液:由0.294g谷氨酰胺和20ml无钙CZB溶液配制而成;3.1.5)细胞松弛素B溶液:由细胞松弛素B以1mg/ml的配比溶于二甲基亚砜溶液中制备而成;3.1.6)聚乙烯吡咯烷酮溶液:质量分数为10%的PVP溶液:由1g PVP和10ml HCZB配制而成;质量分数为3%的PVP溶液:由0.3g PVP和10ml HCZB配制而成;3.1.7)透明质酸酶10X浓储液:由20ml M2培养液和100mg透明质酸酶配制而成;3.2)HCZB胚胎操作液:100ml,pH=7.4;组成:步骤3.1.1)中制备的HCZB浓储液99ml;碳酸氢钠211mg、步骤3.1.2)中制备的二水氯化钙100X浓储液1ml、丙酮酸钠3mg、谷氨酰胺1ml、牛血清白蛋白500mg;3.3)无钙CZB溶液:组成:步骤3.1.1)中制备的HCZB浓储液100ml、碳酸氢钠211mg、丙酮酸钠3mg、谷氨酰胺1ml、牛血清白蛋白500mg;3.4)M2胚胎操作液3.4.1)M2、M16浓储液浓储液A(10×)200mL;组成:氯化钠11.068g、氯化钾0.712g、磷酸二氢钾0.324g、7水硫酸镁0.586g、乳酸钠8.698g、葡萄糖2g、青霉素0.12g、链霉素0.1g;浓储液B(10×)20mL;组成:碳酸氢钠0.4202g、酚红0.002g;浓储液C(100×)10mL;组成:丙酮酸钠0.036g;浓储液D(100×)50mL;组成:二水氯化钙1.26g;浓储液E(100×)250ml;组成:4‑2‑羟乙基‑1‑哌嗪乙磺酸14.895g、酚红0.025g。3.4.2)从浓储液配制M2培养液M2培养液体积10mL:浓储液A(10×)1.00mL、浓储液B(10×)0.16mL、浓储液C(100×)0.10mL、浓储液D(100×)0.10mL、浓储液E(100×)0.84mL、无酶水7.80mL、牛血清白蛋白40mg;M2培养液体积50mL:浓储液A(10×)5.00mL、浓储液B(10×)0.80mL、浓储液C(100×)0.50mL、浓储液D(100×)0.50mL、浓储液E(100×)4.20mL、无酶水39.0mL、牛血清白蛋白200mg;M2培养液体积100mL:浓储液A(10×)10.0mL、浓储液B(10×)1.60mL、浓储液C(100×)1.00mL、浓储液D(100×)1.00mL、浓储液E(100×)8.40mL、无酶水78.0mL、牛血清白蛋白400mg;M2培养液体积200mL:浓储液A(10×)20.0mL、浓储液B(10×)3.20mL、浓储液C(100×)2.00mL、浓储液D(100×)2.00mL、浓储液E(100×)16.80mL、无酶水156.0mL、牛血清白蛋白800mg;3.4.3)从浓储液配制M16培养液M6培养液体积10mL:浓储液A(10×)1.00mL、浓储液B(10×)1.00mL、浓储液C(100×)0.10mL、浓储液D(100×)0.10mL、无酶水7.80mL、牛血清白蛋白40mg;M6培养液体积50mL:浓储液A(10×)5.00mL、浓储液B(10×)5.00mL、浓储液C(100×)0.50mL、浓储液D(100×)0.50mL、无酶水39.0mL、牛血清白蛋白200mg;M6培养液体积100mL:浓储液A(10×)10.00mL、浓储液B(10×)10.00mL、浓储液C(100×)1.0mL、浓储液D(100×)1.0mL、无酶水78.0mL、牛血清白蛋白400mg;M6培养液体积200mL:浓储液A(10×)20.00mL、浓储液B(10×)20.00mL、浓储液C(100×)2.0mL、浓储液D(100×)2.0mL、无酶水156.0mL、牛血清白蛋白800mg;3.5)配制KSOM‑AA胚胎培养液每100mLKSOM‑AA胚胎培养液中含乙二胺四乙酸二钠盐0.38mg、氯化钠559.5mg、氯化钾18.5mg、磷酸二氢钾4.75mg、7水硫酸镁4.95mg、乳酸钠盐溶液0.174ml、葡萄糖3.60mg、碳酸氢钠210.0mg、谷氨酰胺14.5mg、丙酮酸钠2.2mg、青霉素6.3mg、链霉素5.0mg;必需氨基酸1.0ml、非必需氨基酸0.5ml;其中乙二胺四乙酸二钠盐优先滴加,将100mg牛血清白蛋白添加到100mLKSOM‑AA胚胎培养液中,轻轻混匀使牛血清白蛋白缓慢溶解,不要剧烈摇动液体以避免产生泡沫而导致蛋白质变性;用0.22μm的针头式滤器过滤培养液到无菌的塑料管内,溶液保存在4℃,保存时间1~2周;4)实验器材:4.1)核移植实验器材:Corning塑料培养皿、充油型注射仪、带有Nomarski或Hoffman光学系统的倒置显微镜、锻针仪、压电陶瓷系统、拉针仪、显微操作用针、水银;4.2)细胞培养实验器材:1.5ml、0.6ml和0.2ml离心管;细胞培养皿、离心管、冻存管;细胞培养用移液管;离心机;体式镜;培养箱;生物安全柜;5)实验方法:5.1)准备供体细胞:5.1.1)制备小鼠饲养细胞;5.1.2)制备胚胎干细胞;5.1.3)制备胎儿成纤维细胞;5.2)体细胞核移植:5.2.1)收集MⅡ期卵母细胞;5.2.2)准备供体细胞:包括胚胎干细胞收集、MEF细胞收集、卵丘细胞的收集;5.3)进行核移植操作:包括:准备显微操作用的操作滴、MII卵母细胞的去核、供体核注射、重构胚的激活、重构胚体外培养;5.4)胚胎移植:5.4.1)准备结扎雄鼠与假孕雌鼠;5.4.2)进行输卵管伞口移植;5.4.3)进行子宫角移植;6)进行数据统计和分析:采用SPSS10.0统计学软件分析处理,P<0.05为差异显著,P<0.01为差异极显著;6.1)选取最佳激活液:将卵丘细胞重构胚、胎儿成纤维细胞重构胚和胚胎干细胞重构胚分别用无钙CZB、无钙KSOM激活6h后统计假原核形成率;得到无钙KSOM激活液为最佳激活液;于体式镜下统计重构胚的状况,卵丘细胞重构胚经无钙KSOM激活后,成功率为93.5%,成功率极显著,优于无钙CZB激活液,P<0.01;对于胎儿成纤维细胞重构胚和ES重构胚,两种激活液的激活效果差异不显著,P>0.05,但这两种重构胚经无钙KSOM激活后死亡率显著低于无钙CZB激活液,P<0.05,表明,无钙KSOM激活液是最好的小鼠重构胚激活液;6.2)选取重构胚培养液:采用步骤6.1)确定的无钙KSOM激活液,将激活后的卵丘细胞重构胚、胎儿成纤维细胞重构胚和胚胎干细胞重构胚分别用CZB、αMEM、M16和KSOM‑AA培养液培养,4.5d后比较重构胚的囊胚发育率;得到KSOM‑AA液作为重构胚培养液;在这4种培养液中,卵丘细胞重构胚均有较高的卵裂率,囊胚发育率也很高;卵丘细胞重构胚的卵裂率在4种胚胎培养液中无差异,但在KSOM‑AA培养液中囊胚率最高,为78.4%;在αMEM中,胎儿成纤维细胞重构胚的卵裂率显著高于其它培养液,在KSOM‑AA培养液中胎儿成纤维细胞重构胚的囊胚率显著高于αMEM培养液,αMEM和KSOM‑AA培养液相比较为37.1vs.30.2%,P<0.05;胚胎干细胞重构胚在KSOM‑AA培养液中卵裂率和囊胚率均显著高于其它3种培养液,在所用的4种培养液中,KSOM‑AA对三类克隆胚胎的培养效果最好,因此在克隆操作中,均选用KSOM‑AA培养液作为重构胚培养液;6.3)选取最佳胚胎移植方法采用步骤6.1)确定的无钙KSOM激活液和步骤6.2)确定的KSOM‑AA培养液,将卵丘细胞重构胚通过输卵管移植法和子宫移植法进行胚胎移植,统计核移植小鼠的出生率;卵丘细胞重构胚经无钙KSOM激活液激活6h后,将形态良好并且形成假原核的重构胚,于KSOM‑AA培养液中培养,培养12h后,将卵裂胚采用输卵管移植;培养3.5d后发育至囊胚的重构胚进行子宫角移植;统计小鼠出生情况采用输卵管移植时,每侧移植2‑细胞时期重构胚15枚;子宫角移植时,每侧子宫角移植7枚囊胚;子宫角移植组无一发育到期,而输卵管移植组有1只孕鼠发育到期,并生下1仔,出生率1.67%,得出,重构胚体外发育至MⅡ期细胞时期,经输卵管双侧移植,每侧移植15枚胚胎获得核移植动物效率高。
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