[发明专利]GLP-1受体激动剂生物学活性测定方法有效

专利信息
申请号: 200910265928.1 申请日: 2009-12-21
公开(公告)号: CN101798588A 公开(公告)日: 2010-08-11
发明(设计)人: 蔡永青;陈霞;梁成罡;李克坚 申请(专利权)人: 上海华谊生物技术有限公司
主分类号: C12Q1/02 分类号: C12Q1/02;G01N21/31
代理公司: 暂无信息 代理人: 暂无信息
地址: 201321 上海市浦东*** 国省代码: 上海;31
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摘要:
搜索关键词: glp 受体 激动剂 生物学 活性 测定 方法
【说明书】:

技术领域

发明涉及生物活性测定方法,更具体的说涉及GLP-1受体激动剂的生物活性测定方法。

背景技术

糖尿病已成为威胁人类生命健康的重大疾病,糖尿病药物研究中GLP-1受体激动剂占据着越来越重要的地位【药品评价.2009,24(1):32-33;药品评价.2008,5(11):504-505】;GLP-1受体激动剂主要有胰高血糖素样肽-1(GLP-1)、促胰岛素分泌肽(Exendin-4)、人GLP-1类似物利拉鲁肽(Liraglutide),其生物学活性的测定由于没有活性测定国际标准品而成为一大难点【中国生物制品学杂志.2004,17(1):29-31】。

GLP-1受体激动剂的生物学功能主要是特异性地与胰岛细胞的GLP-1受体相互作用,引起相应的信号通路改变,诱导胰岛素的分泌。根据这些生物学功能,测定其生物学活性目前主要有三大类:动物实验【Chin J Chin Pharmacol Ther2004,9(5):527-531】、淀粉酶释放分析实验及细胞测定实验。

动物实验通常需要模型动物,不易获取、成本高,而且只能统计分析是否有活性,只能进行定性分析;淀粉酶释放分析实验的敏感性较差,线性关系不好,仅能作为半定量实验。

细胞测定实验包括第二信使(cAMP)酶链免疫反应分析实验【药物分析杂志。2006,26(12):1691-1693】和化学发光物测定实验【南开大学学报.2007,40(1):92-98】。前者是对信号通路改变过程中cAMP的测定,但由于cAMP在细胞内不稳定存在,易被降解,且cAMP可由多种途径产生,因此专一性不高;再者,使用到的RIN-5F细胞并不是对GLP-1受体这一类激动剂都灵敏,没有普 遍的适用性。化学发光物测定实验需要构建特定的细胞,使之能分泌特定的酶催化底物化学发光,需要花费大量的成本和较高的技术力量【生物化学与生物物理进展.2004,31(4):36-40;生物技术通报.2007,3:118-121】。而且这两者都只是对中间产物的测定,并不是针对GLP-1受体激动剂的生物学功能(诱导分泌胰岛素)这一原理设计的。

相比较而言,本发明的设计就紧密结合这个药理学原理来设计,专一的对终产物胰岛素进行测定,更能体现出药品的实际效果,使得方法更合理、更科学、更实用。其优势具体表现在:

首先,本方法可得到GLP-1受体激动剂促进分泌胰岛素的效应曲线,以此测定GLP-1受体激动剂的生物学活性,能够得出相对精确的效价。而现有的通过模型动物的方法只能定性的确定GLP-1受体激动剂是否有促进分泌胰岛素的作用。

其次,本方法中测定关键物是胰岛素,它是GLP-1受体激动剂与GLP-1受体相互作用后,引起相应的信号通路改变,诱导的最终产物,稳定性高,基本不受细胞内其它物质的影响。且本发明的设计紧密结合GLP-1受体激动剂的药理学原理,专一针对终产物胰岛素,更能体现出药品的实际效果,使得方法更合理、更科学、更实用。而现有的实验方法,不论是以cAMP,还是以化学发光物为目标检测物的细胞试验方法,这两者都只是对中间产物的测定,易降解,不稳定,且中间产物有多种产生途径。

再者,化学发光物测定法所需的细胞需要特定构建,才能使之能分泌能被检测的化学发光物质,需花费大量的成本、较高的技术力量和较长的时间。而本发明用到的Min-6细胞培养条件简单,生长容易,便于操作。

发明内容

本法系根据GLP-1受体激动剂可以促进小鼠胰岛瘤细胞(Min-6)分泌胰岛素的作用,用小鼠/大鼠胰岛素试剂盒定量分泌的胰岛素,于波长450nm,参比波长590nm处测定其吸光度,可得到GLP-1受体激动剂诱导Min-6细胞分泌胰岛素的效应曲线,以此测定GLP-1受体激动剂生物学活性。

由于GLP-1受体激动剂作用于Min-6细胞有一定的葡萄糖浓度要求,本发明通过调节培养基葡萄糖的浓度,在加标准品供试品前使用无糖的培养基培养靶细胞,并用高糖测定培养基溶液稀释标准品供试品,提高Min-6细胞的敏感度。本发明中稀释标准品和供试品的测定培养基的葡萄糖浓度优选为25mM至75mM,更优选为50mM。

本法对于用消化液制成的细胞悬液的浓度有一定的要求;在本发明中,细胞悬液的密度优选为5×105个/ml。

本法对于细胞加入无糖DMEM培养基后的培养时间有一定的要求;在本发明中培养时间优选为1-6小时,更优选为2-4小时。

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