[发明专利]β-1,4-内切壳聚糖酶(Aus CsnA)基因的克隆及重组酶的制备无效
申请号: | 201110410463.1 | 申请日: | 2011-12-12 |
公开(公告)号: | CN102392035A | 公开(公告)日: | 2012-03-28 |
发明(设计)人: | 邬敏辰;胡蝶;史红玲;陈忠法;李剑芳 | 申请(专利权)人: | 江南大学 |
主分类号: | C12N15/56 | 分类号: | C12N15/56;C12N9/42;C12N15/10;C12N1/19;C12N15/81;C12R1/66;C12R1/84 |
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地址: | 214122 江*** | 国省代码: | 江苏;32 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 内切壳 聚糖 aus csna 基因 克隆 重组 制备 | ||
1.一种来源于宇佐美曲霉(Aspergillus usamii)E001菌株糖苷水解酶第75家族(GH75)的新型壳聚糖酶基因(Aus csnA),其完整mRNA和DNA的核苷酸序列分别为SEQ ID NO:1和SEQ ID NO:2。
2.由权利要求1所述的壳聚糖酶基因(Aus csnA)编码的新型壳聚糖酶(Aus CsnA),其完整的氨基酸序列对应于序列表中的为SEQ ID NO:3。
3.Aus csnA完整mRNA和DNA序列的获取方法:
(1)Aus csnA 3′端mRNA序列的克隆:首先对Aspergillus fumigatus、Aspergillus oryzae和Aspergillus terreus GH75的壳聚糖酶序列进行同源比对,找出两段约8个氨基酸的保守序列,再对该两段氨基酸序列的mRNA进行同源比对,设计两条正向简并引物Csn-F1和Csn-F2;
Csn-F1:5’-ATGGACAT(A/T)GACTGCGA(C/T)GG-3’
Csn-F2:5’-GCCAATAT(A/C)CA(T/C)CC(G/C)TATGTGGT-3’
以A.usamii E001总RNA为模板,Oligo dT-Adaptor Primer为引物反转录合成cDNA的第一条链;以M13 Primer M4和Csn-F1为引物进行第一轮PCR,其反应条件为:94℃2min,30个循环(94℃30s,52℃30s,72℃90s),72℃10min;以M13Primer M4和Csn-F2为引物进行第二轮PCR,其反应条件为:94℃2min,30个循环(94℃30s,52℃30s,72℃90s),72℃10min;目的条带经克隆、测序,得到Aus csn 3′端mRNA序列;
(2)Aus csnA 5′端mRNA序列的克隆:基于上述得到的Aus csnA 3′端mRNA序列,设计两条反向引物Csn-RE1和Csn-RE2;
Csn-RE1:TTTGGTCTTGGATGGACTCG
Csn-RE2:CCCGTCGCAGTCTATGTCCA
以反转录合成的cDNA第一条链为模板、Outer Primer和Csn-RE1为引物进行第一轮PCR,其反应条件为:94℃3min,30个循环(94℃30s,55℃30s,72℃60s),72℃10min;以Inner Primer和Csn-RE2为引物进行第二轮PCR,其反应条件为:94℃3min,30个循环(94℃30s,55℃30s,72℃60s),72℃10min;目的条带经克隆、测序,得到Aus csnA 5′端mRNA序列;
(3)Aus csnA 5′端启动子序列的克隆:以经处理的A.usamii E001基因组DNA为模板,第一轮PCR以T-PrimerF和Csn-RE1为引物,反应条件为:94℃4min,30个循环(94℃30s,55℃30s,72℃60s),72℃10min;第二轮PCR以T-PrimerF和Csn-RE2为引物,反应条件为:94℃,4min,30个循环(94℃30s,55℃30s,72℃60s),72℃10min;目的条带经克隆、测序,得到Aus csnA 5′端启动子序列;
(4)Aus csnA 3′端转录终止区序列的克隆:以经处理的A.usamii E001基因组DNA为模板,第一轮PCR以Csn-F1和T-PrimerR为引物,反应条件为:94℃4min,30个循环(94℃30s,55℃30s,72℃60s),72℃10min;第二轮PCR以Csn-F2和T-PrimerR为引物,反应条件为:94℃4min,30个循环(94℃30s,55℃30s,72℃60s),72℃10min;将两轮PCR产物用1%琼脂糖凝胶电泳分析,割胶回收目的条带并与pUCm-T连接(pUCm-T-csnA3T),转化JM109,经酶切鉴定正确后送上海生工测序得到Aus csnA 3′端转录终止区序列;
4.Aus CsnA工程菌的构建和表达方法:
(1)含编码Aus CsnA成熟肽基因的表达质粒的构建:以M13 Primer M4和mCsn-F为引物进行第一轮PCR(94℃2min;30个循环,94℃30s,53℃30s,72℃60s;72℃10min);以mCsn-F和Csn-R为引物第二轮PCR(94℃2min;30个循环,94℃30s,53℃30s,72℃45s;72℃10min);将第二轮PCR的目的条带进行克隆、测序;测序正确的pUCm-T-csnA与pPIC9K质粒均用EcoR I和Avr II进行双酶切,回收的酶切产物在T4DNA连接酶的作用下进行连接,得到重组质粒pPIC9K-csnA,并对重组质粒进行测序鉴定;
(2)GS115/csnA的构建、表达、产物纯化及活性测定:用Sal I对pPIC9K-csnA进行线性化,按照毕赤酵母表达手册进行电转化、筛选,得到高拷贝的毕赤酵母重组子GS115/csnA;该工程菌用1.0%甲醇诱导96h,DNS法测得发酵液中重组壳聚糖酶活性达80U/mL;发酵液经离心后的上清液为重组Aus CsnA粗酶液,经截留分子量为10kDa的超滤膜浓缩,再经DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换层析和Sephadex G-75凝胶过滤层析纯化,纯化后经SDS-PAGE检测为单一条带,并显示重组壳聚糖酶分子量为24kDa;该重组壳聚糖酶最适作用温度50℃,最适作用pH 5.0,该酶在pH 4.0~7.0、50℃以下稳定。
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