[发明专利]一种快速制备犬门脉高压症动物模型的方法无效

专利信息
申请号: 201210290532.4 申请日: 2012-08-15
公开(公告)号: CN102836445A 公开(公告)日: 2012-12-26
发明(设计)人: 吕毅;严小鹏;王浩华;马佳;于良;刘仕琪;董鼎辉;马锋 申请(专利权)人: 西安交通大学
主分类号: A61K49/00 分类号: A61K49/00
代理公司: 西安智大知识产权代理事务所 61215 代理人: 贺建斌
地址: 710049 陕*** 国省代码: 陕西;61
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摘要:
搜索关键词: 一种 快速 制备 犬门脉 高压 动物 模型 方法
【说明书】:

技术领域

发明涉及一种制备动物模型的方法,具体涉及一种快速制备犬门脉高压症动物模型的方法。

背景技术

门脉高压症是临床常见疾病,有关门脉高压症的病因、发病机理及相关治疗措施和疗效的评价均离不开动物实验,而进行动物实验的前提是要建立动物模型。目前,有关门脉高压症动物模型的建立方法很多,归纳起来主要有三种:饮食诱导法、注射化学药物法和缩窄门静脉法。饮食诱导法是通过给实验动物饲料内添加高脂肪物质,并配以高酒精含量饮品来诱发肝硬变过程,最终导致门静脉高压,这种方法建立的门脉高压动物模型的病理变化过程与人类的病理变化过程差异较大,其最大的缺点是周期长、成功率低。饮食诱导法建立门脉高压动物模型需要6-12月时间,成功率约20%-60%。化学法主要通过各种肝毒性药物不断使动物肝脏出现损伤-修复-再损伤-再修复过程,从而实现肝硬变乃至最终实现门静脉高压症。这种方法成功率较高,其病理变化与人类临床病理变化相似,但该法最大缺点是需反复给动物注射化学药物,操作麻烦,不易管理动物,另一个缺点是建立周期较长,一般需要3-6个月。缩窄门静脉法是在开腹手术下用丝线缩窄动物的门静脉,或将门静脉切开,在门静脉内置入异物造成门静脉部分堵塞使门静脉血液回流受阻而实现门静脉高压,其优点是模型建立较快,但最大的缺点是该法建立的模型由于手术对门静脉造成一定程度的损伤和粘连,不能用于外科手术治疗门脉高压症的研究,而且操作复杂、成功率不高、其病理变化过程与人类发病过程差异较大。综上所述,现有的建立门脉高压症动物模型的方法存在着各种缺陷,严重影响相关科学研究的开展。

发明内容

为了克服上述现有技术存在的不足,本发明的目的在于提供一种快速制备犬门脉高压症动物模型的方法,具有速度快、损伤小、操作简单、成功率高、适应于各种目的的门脉高压症研究。

为了达到上述目的,本发明所采用的技术方案是:

一种快速制备犬门脉高压症动物模型的方法,包括以下步骤:

步骤1,配制聚氨酯-四氢呋喃-四氯化碳溶液,三种物质依次按(8-15)g:100ml:(8-12)ml混合于玻璃容器内,密封,室温静置12小时,然后轻微震荡5min,即可使用;

步骤2,使用时根据实验动物的体重,按照0.8-1.2ml/kg的剂量用玻璃注射器吸取聚氨酯-四氢呋喃-四氯化碳溶液,常规麻醉后在B超引导或小切口开腹下直接穿刺门静脉缓慢注射该溶液;

步骤3,术后常规饲养实验动物即可。

本发明通过配置聚氨酯-四氢呋喃-四氯化碳溶液,在B超引导下穿刺门静脉或小切口开腹下穿刺门静脉注射该溶液,即可瞬时建立门脉高压症动物模型。这种方法建立门静脉高压症动物模型具有速度快、损伤小、操作简单、成功率高、适应于各种目的的门脉高压症研究。

具体实施方式

下面结合实施例对本发明作更详细的说明。

实施例1

一种快速制备犬门脉高压症动物模型的方法,包括以下步骤:

步骤1,配制聚氨酯-四氢呋喃-四氯化碳溶液,三种物质依次按8g:100ml:8ml混合于玻璃容器内,密封,室温静置12小时,然后轻微震荡5min,即可使用;

步骤2,使用时根据实验动物的体重,按照0.8ml/kg的剂量用玻璃注射器吸取聚氨酯-四氢呋喃-四氯化碳溶液,常规麻醉后在B超引导或小切口开腹下直接穿刺门静脉缓慢注射该溶液;

步骤3,术后常规饲养实验动物即可。

在术中注射完聚氨酯-四氢呋喃-四氯化碳溶液后门静脉压力立即可达到正常压力的2-3倍,术后8-12周,门静脉和下腔静脉之间的一些交通支逐渐开放,门静脉压力会有小幅度下降,但仍会维持在正常压力的1倍以上。另外,四氯化碳可导致肝细胞损伤,从而诱导肝硬化的形成,这样也有利于门静脉高压的维持。

实施例2

一种快速制备犬门脉高压症动物模型的方法,包括以下步骤:

步骤1,配制聚氨酯-四氢呋喃-四氯化碳溶液,三种物质依次按15g:100ml:12ml混合于玻璃容器内,密封,室温静置12小时,然后轻微震荡5min,即可使用;

步骤2,使用时根据实验动物的体重,按照1.2ml/kg的剂量用玻璃注射器吸取聚氨酯-四氢呋喃-四氯化碳溶液,常规麻醉后在B超引导或小切口开腹下直接穿刺门静脉缓慢注射该溶液;

步骤3,术后常规饲养实验动物即可。

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