[发明专利]一种验证CIDEC基因5端调控区单核苷酸多态性位点遗传效应的方法与应用有效
申请号: | 201310003907.9 | 申请日: | 2013-01-06 |
公开(公告)号: | CN103243156A | 公开(公告)日: | 2013-08-14 |
发明(设计)人: | 陈宏;王璟;滑留帅;潘虹;曹修凯;蓝贤勇;胡沈荣;雷初超 | 申请(专利权)人: | 西北农林科技大学 |
主分类号: | C12Q1/68 | 分类号: | C12Q1/68 |
代理公司: | 暂无信息 | 代理人: | 暂无信息 |
地址: | 712100 *** | 国省代码: | 陕西;61 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 验证 cidec 基因 调控 核苷酸 多态性 遗传 效应 方法 应用 | ||
1.黄牛CIDEC基因(AC_000179.1)5端调控区有十处SNP位点:g.-501G>A;-546T>C;-643T>G;-714T>C;-727C>T;-762C>T;-763C>T;-841T>C;-956G>A;-974C>T,这十处SNP位点在南阳牛群体中共形成了九种单倍型,其中单倍型5,6,7频率过低,所以在转录活性分析中只分析了单倍型1,2,3,4,8,9六种。
2.黄牛CIDEC基因不同单倍型转录活性的检测方法包括以下步骤:
(1)以包含CIDEC基因的待测黄牛全基因组DNA为模板,使用引物P来扩增黄牛CIDEC基因不同单倍型;
(2)对步骤(1)的扩增产物进行PCR产物的切胶回收及纯化;
(3)用限制性内切酶KpnI和XhoI分别消化步骤(2)的纯化产物和荧光素酶报告基因载体pGL3-Basic质粒;
(4)将步骤(3)中的消化产物经切胶回收及纯化;
(5)使用T4DNA连接酶将步骤(4)中的纯化产物进行连接;
(6)将步骤(5)中的连接产物转化Top10大肠杆菌感受态细胞中,挑取的单克隆通过菌液PCR、双酶切鉴定以及测序三重验证;
(7)将步骤(6)中连接正确的质粒转入3T3-L1前脂肪细胞系中,48小时以后使用双荧光报告系统试剂盒测定不同单倍型的转录活性;
(8)将步骤(7)中的不同单倍型转录活性与其与生产性状的关联分析结果进行比对,从转录活性水平解释关联分析结果。
(9)将包含十个突变序列的相应CIDEC片段输入Genomatix数据库(http://www.genomatix.de),搜索识别序列包含或临近这十个突变位点的顺式作用元件。从顺式作用元件与其对应的转录因子水平解释关联分析结果。
如上述技术方案所述的黄牛CIDEC基因不同单倍型转录活性的检测方法,其中,步骤(1)所述的引物对P为:
上游引物:cggggtacctgggaacaggagaacatttcag 31bp;
下游引物:ccgctcgagacaagatgccaaggtgacttaca 32bp。
所述的PCR扩增反应程序为:
94℃预变性5min;30个循环94℃变性30s,65℃退火30s,72℃延伸60s;72℃延伸10min。
3.如上述技术方案所述的黄牛CIDEC基因不同单倍型转录活性的检测方法,其中,步骤(2)、(4)所述的琼脂糖凝胶的质量浓度为1.5%。
4.如上述技术方案所述的黄牛CIDEC基因不同单倍型转录活性的检测方法,其中,步骤(3)所述的酶切体系为:KpnI和XhoI各5μL,10×Buffer M10μL,纯化产物或pGL3-Basic载体质粒<5μg,超纯水补至100μL。
5.如上述技术方案所述的黄牛CIDEC基因不同单倍型转录活性的检测方法,其中,步骤(5)所述的连接体系为:10×T4DNALigaseBuffer1μL,DNA片段XμL,pGL3-Basic载体(约50ng/μL)1μL,T4DNA连接酶(3U/μL)1μL,加超纯水至10μL,其中载体与目的片段的摩尔比控制在1:3-1:8。
6.如上述技术方案所述的黄牛CIDEC基因不同单倍型转录活性的检测方法,其中,步骤(6)所述的菌液PCR所使用的引物和扩增条件与步骤(1)中的一样,步骤(6)所述的双酶切体系为:KpnI和XhoI各1μL,10×Buffer M1μL,连接产物质粒<0.5μg,超纯水补至10μL。
7.如上述技术方案所述的黄牛CIDEC基因不同单倍型转录活性的检测方法,其中,步骤(7)所述的转染体系为:385ng不同单倍型载体,15ng内参质粒载体pRL-TK,1μL脂质体2000,60μL无血清DMEM培养基。
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