[发明专利]柱状黄杆菌多克隆抗体的制备方法无效
申请号: | 201310478221.5 | 申请日: | 2013-10-15 |
公开(公告)号: | CN103524616A | 公开(公告)日: | 2014-01-22 |
发明(设计)人: | 吕娜;张捷 | 申请(专利权)人: | 浙江万里学院 |
主分类号: | C07K16/12 | 分类号: | C07K16/12 |
代理公司: | 吉林长春新纪元专利代理有限责任公司 22100 | 代理人: | 白冬冬 |
地址: | 315100 浙*** | 国省代码: | 浙江;33 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 柱状 杆菌 克隆 抗体 制备 方法 | ||
1.一种柱状黄杆菌多克隆抗体的制备方法,其特征在于:包括如下步骤:
a、采用甲醛灭活的方法制备病原菌颗粒性抗原;
b、取a作为抗原,与弗氏完全佐剂等体积混合,免疫健康白兔;
c、两周后取a与弗氏不完全佐剂等体积混合,对b中白兔采用同样方法进行二次免疫,采用间接ELISA法监测抗血清效价,并按每隔两周免疫一次的方式进行第三、四次免疫,第四次免疫两周后单独用颗粒性免疫原冲击免疫一次;
d、收集白兔血液,分离抗血清;
e、纯化抗血清,得到目标多克隆抗体,并鉴定其蛋白含量、效价及特异性;
步骤a中的病原菌为柱状黄杆菌G4R3,为柱状黄杆菌的代表类群。
2.根据权利要求1所述的柱状黄杆菌多克隆抗体的制备方法,其特征在于:步骤a中颗粒性抗原的制备方法为:取穿刺菌种接种至胰胨液体培养基中,27℃摇床活化24h;将活化后的菌液做平板划线分离;单克隆菌落转接至100ml胰胨液体培养基中增菌;菌液用新鲜配制的液体培养基做适当梯度稀释,采用分光光度法法测定各稀释度菌液的OD600值,结合平板菌落计数法计数菌液浓度,制备活菌数与OD600值的标准曲线,根据标准曲线计算菌液浓度将扩增的菌液离心,并用无菌生理盐水洗脱,弃上清,反复2次,离心收集菌体;生理盐水重悬,并于重悬菌液加入0.5%的甲醛4℃灭活24h,制备柱状黄杆菌颗粒性抗原;24 h后将灭活菌液离心弃上清,沉淀用灭菌生理盐水洗涤3次,调整菌液浓度。
3.根据权利要求1所述的柱状黄杆菌多克隆抗体的制备方法,其特征在于:步骤a中用于培养柱状黄杆菌的培养基为胰胨培养基,培养条件为:27℃培养24-36h,其中胰胨培养基:0.5‰胰蛋白胨,0.2‰牛肉膏,0.5‰酵母浸粉,醋酸钠0.2‰,1 moL/L NaOH调pH至7.2-7.4,高压灭菌20min。
4.根据权利要求1所述的柱状黄杆菌多克隆抗体的制备方法,其特征在于:步骤b中,实验动物为2kg健康雄性新西兰白兔;免疫方法采用背部脊柱两侧皮下5点注射免疫,免疫剂量为0.5×109cfu/只。
5.根据权利要求1所述的柱状黄杆菌多克隆抗体的制备方法,其特征在于:步骤b和步骤c中,采用的是漩涡震荡乳化剂逐滴加入颗粒性抗原的方法:取灭菌的青霉素瓶,按需要量加入弗氏完全佐剂或弗氏不完全佐剂,盖好灭菌胶塞,用漩涡震荡器使之高速旋转,用灭菌注射器吸取与佐剂等体积的颗粒性细菌抗原逐滴加入佐剂中,可见抗原液滴入后在佐剂中呈球状并逐渐变小消失;抗原溶液全部加完后再涡旋15 min,采用滴入静止的冷水液面5 min不扩散的方法检测是否制成油包水的乳剂;由于液体在漩涡震荡过程中会释放大量热量,为较好的保存抗原性,青霉素瓶每震荡5min后置于冰浴中1min。
6.根据权利要求1所述的柱状黄杆菌多克隆抗体的制备方法,其特征在于:步骤c中,为获得高效价的抗体,还应在每次免疫完一周后耳缘静脉采血检测血清抗体效价,当抗体效价达到最大值时,可以分离免疫动物血清。
7.根据权利要求1所述的柱状黄杆菌多克隆抗体的制备方法,其特征在于:间接ELISA检测法,包括如下步骤:
a.用颗粒性抗原包被酶标板,洗板;
b.用含3%牛血清白蛋白的PBST封闭包被的酶标板,洗板;
c.加待检血清或抗体,洗板;
d.加酶标二抗,洗板;
e.加底物OPD显色;
f. 2 mol/L硫酸终止反应;
g.用酶联免疫检测仪在波长492nm处,读吸光值。
8.根据权利要求1所述的柱状黄杆菌多克隆抗体的制备方法,其特征在于:步骤e中,抗血清的纯化方法采用辛酸-硫酸铵法纯化,具体操作如下:在收集的抗血清中加入4倍体积的0.06 mol/L pH 4.0的醋酸缓冲液,用0.1mol/L NaOH调pH至4.8;
电磁搅拌下缓慢滴入正辛酸至终浓度为33μL/mL以沉淀非IgG蛋白,继续磁力搅拌30min后,4℃静置2h,12000rpm离心30 min,除去沉淀;
取上清并加入1/10体积的0.1mol/L PBS,用2mol/L NaOH小心调节pH至7.4,在4℃冰浴下加入硫酸铵至终浓度为0.277g/mL,搅拌30min,4℃静置2h, 10000rpm离心30 min;
弃上清,将沉淀溶于0.2mL 0.01mol/L PBS中,用0.01mol/L PBS于4℃透析过夜,期间每 3~4h换液一次,之后于4℃ 5000g离心20min,去除不溶性沉渣,上清用PBS 稀释至纯化前相同体积,于-20℃冻存。
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