[发明专利]无蛋白包被板封闭液

说明书

技术领域    

本发明属于临床体外检测技术领域，特别涉及一种无蛋白包被板封闭液。

背景技术   

1971年Engvall和Perlmann发表了酶联免疫吸附剂测定（enzyme linked immunosorbent assay，elisA）用于IgG定量测定的文章，使得1966年开始用于抗原定位的酶标抗体技术发展成液体标本中微量物质的测定方法。这一方法的基本原理是：①使抗原或抗体结合到某种固相载体表面，并保持其免疫活性。②使抗原或抗体与某种酶连接成酶标抗原或抗体，这种酶标抗原或抗体既保留其免疫活性，又保留酶的活性。在测定时，把受检标本（测定其中的抗体或抗原）和酶标抗原或抗体按不同的步骤与固相载体表面的抗原或抗体起反应。用洗涤的方法使固相载体上形成的抗原抗体复合物与其他物质分开，最后结合在固相载体上的酶量与标本中受检物质的量成一定的比例。加入酶反应的底物后，底物被酶催化变为有色产物，产物的量与标本中受检物质的量直接相关，故可根据颜色反应的深浅刊物定性或定量分析。由于酶的催化频率很高，故可极大地地放大反应效果，从而使测定方法达到很高的敏感度。该检测体系中，保证一个稳定的固相载体包被板最为重要。

将抗原或抗体固定在过程称为包被(coating)。换言之，包被即是抗原或抗体结合到固相载体表面的过程。蛋白质与聚苯乙烯固相载体是通过物理吸附结合的，靠的是蛋白质分子结构上的疏水基团与固相载体表面的疏水基团间的作用力。这种物理吸附是非特异性的，受蛋白质的分子量、等电点、浓度等的影响。载体对不同蛋白质的吸附能力是不相同的，大分子蛋白质较小分子蛋白质通常含有更多的疏水基团，故更易吸附到固相载体表面。IgG 对聚苯乙烯等固相具有较强的吸附力，其联结多发生在 Fc 段上，抗体结合点暴露于外，因此抗体的包被一般均采用直接吸附法。

封闭(blocking)是继包被之后用高浓度的无关大分子溶液再包被的过程。抗原或抗体包被时所用的浓度较低，吸收后固相载体表面尚有未被占据的空隙，封闭就是让大量不相关的蛋白质充填这些空隙，从而排斥在 ELISA 其后的步骤中干扰物质的再吸附。封闭的手续与包被相类似。如果封闭做的不好，造成制备的试剂盒出现假阳性的情况，因此封闭工作对于ELISA检测试剂盒的准确检测至关重要。

封闭液中的大分子物质可以与固相载体表面上的空白位置结合，以机械填补（堆积）和吸附覆盖的方式结合在固相载体表面，有效地覆盖了蛋白结合位点，避免样本中的背侧蛋白非特异性结合到固相载体表面，出现假阳性的现象。封闭剂应封闭所有的未结合位点而不影响表面上的靶蛋白，同时也不结合靶蛋白表位、不与抗体或检测蛋白有交叉反应。

封闭液常用的物质有BSA、脱脂牛奶、络蛋白等，但是大部分BSA中有抗体残留，会导致抗原/抗体之间的交叉污染，产生高背景，使得本底水平增高；由于奶粉的成分复杂，而且封闭后的载体不易长期保存，因此在试剂盒的制备中较少应用；络蛋白虽然比较纯净，稳定性也较好，但是由于蛋白上的离子基团非特异性吸附，会导致封闭后的微孔板空白吸光度增高，影响试剂盒检测的线性和灵敏度；同时几种常见的封闭液封闭处理后的包被板在 2~8℃冰箱存放一周或37℃破坏一天，其生物活性就损失了50％以上。

可见，常规的封闭液应用后，包被板的本底较高，而且封闭后的包被板稳定性较差。

发明内容   

针对于以上常规封闭液存在的问题，本发明采用一种以高分子物质为主体制备的无蛋白封闭液，分子呈中性，无特异性吸附，性质稳定，封闭时间也较BSA短，能达到降低本底且稳定包被板的效果。

本发明是通过以下措施实现的：

一种无蛋白包被板封闭液，含有以下原料：

pH=7.4的Tris-HCL缓冲液   0.01-0.1mol/L，

大分子物质                 0.5-1g/L，

表面活性剂                 0.5-5g/L，

海藻糖                     1-10g/L，

叠氮钠                     0.1-1g/L，

所述大分子物质为PEG-20000、聚乙烯吡咯烷酮中的一种或两种的混合物。

所述的无蛋白包被板封闭液，含有以下原料：

pH=7.4的Tris-HCl缓冲液   0.1mol/L，

PEG-20000                  1g/L，