[发明专利]一条与猪瘟E0蛋白相结合的多肽序列及其应用有效
申请号: | 201510078013.5 | 申请日: | 2015-02-14 |
公开(公告)号: | CN104650185B | 公开(公告)日: | 2017-11-10 |
发明(设计)人: | 张改平;王方雨;赵东;郝慧芳;滕蔓;邓瑞广 | 申请(专利权)人: | 河南省农业科学院 |
主分类号: | C07K7/06 | 分类号: | C07K7/06;G01N33/68 |
代理公司: | 郑州市华翔专利代理事务所(普通合伙)41122 | 代理人: | 张爱军 |
地址: | 450002 河*** | 国省代码: | 河南;41 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一条 猪瘟 e0 蛋白 相结合 多肽 序列 及其 应用 | ||
技术领域
本发明属于病毒检测领域,主要涉及猪瘟病毒E0结合多肽及其应用。
背景技术
猪瘟病毒(classical swine fever virus,CSFV) E0糖蛋白既是包膜蛋白,又是一种核酸酶,其活性对病毒在宿主体内的持续感染有直接关系。在CSFV编码的蛋白中,囊膜蛋白E0和E2研究的最为清楚,因为这两个蛋白均位于病毒粒子的表面,对于一个有囊膜的病毒来说,镶嵌在囊膜中的糖蛋白对于病毒识别、吸附并进入宿主细胞是十分重要的。EO糖蛋白从病毒基因组ORF上第268个氨基酸开始到第494个氨基酸为止,共227个氨基酸,其甲基化程度很高,分子量为44-48Kda,依靠二硫键的连接二聚体的形式存在,分子量为97KD。真核细胞上普遍存在着可与E0结合的细胞受体,E0与细胞的结合为不可逆过程。
噬菌体展示技术是当前研究多肽与蛋白质作用的一种有效手段。这一技术将多肽的编码序列克隆到噬菌体壳蛋白的合适位置,并且要保证其正确的翻译序列,也不影响噬菌体壳蛋白的正常功能,这样噬菌体表达的壳蛋白结构中将会存在外源多肽的序列;伴随着噬菌体子代的重新组装,外源多肽序列将展示在噬菌体的表面。在一般情况下,外源展示的多肽具备一定的空间结构和生物活性,可以与相应的靶分子进行结合。展示肽库与靶蛋白分子结合后,洗去未结合的噬菌体,然后将与靶分子结合的噬菌体洗脱下来感染细胞扩增,经过3轮到6轮的“吸附-洗脱-扩增”,噬菌体与靶分子的结合特异性将逐步提高;经过多次筛选之后,最终可以筛选到与靶分子相结合的高亲和噬菌体。
发明内容
本发明借助噬菌体肽库展示技术,利用表达纯化的猪瘟E0蛋白进行多轮筛选,最终得到可特异结合猪瘟E0蛋白的多肽克隆株,挑选其克隆株进行序列测定,其多肽序列为WRYDQ;人工合成此多肽进行ELISA结合实验,结果证明,人工合成的多肽可与猪瘟病毒E0蛋白有良好的结合能力。借助本发明的多肽,可用于对猪瘟抗原进行定量和定性的检测。
本发明的技术方案:
一条可与猪瘟病毒E0蛋白结合的多肽序列为WRYDQ。
所述多肽序列为线性结合多肽。
所述的多肽序列中,包括以所述的多肽序列为核心,任何对此多肽序列的延长和修饰,修饰材料包括但不局限于纳米材料、荧光材料、酶类、生物素及特定的蛋白质。
将所述多肽序列用于猪瘟的抗原检测,其中包括但不局限于酶联免疫反应检测。
所述的多肽序列在用于对猪瘟抗原进行定量和定性检测中的应用。
本发明的积极有益效果:
(1)本发明借助噬菌体肽库筛选技术,利用表达纯化的猪瘟E0蛋白进行多轮筛选,最终得到可特异结合猪瘟E0蛋白的多肽克隆株。挑选其克隆株进行序列测定,其多肽的核心序列为WRYDQ;人工合此多肽进行ELISA结合实验,结果证明,此人工合成的多肽可与猪瘟病毒E0蛋白有很好的结合;其亲和力可达5.54´109L/mol。
(2)由于病毒难以纯化,因此针对病毒的抗体获得非常不易,本发明设计合成的多肽很好地规避了这一难题,可进行人工合成方法快速取得,检测成本也非常低廉。
(3)本发明的人工合成多肽与人工接种CSFV、人工表达CSFV E0蛋白均可以结合,而且与其它病毒蛋白均不反应,特异性较高。
(4)本方法较人工表达蛋白再进行免疫获得蛋白抗体的过程简便,更易操作;通过对多肽进行标记,可快速地对猪瘟E0蛋白进行定性和定量检测。
附图说明
图1:利用多肽测定培养猪瘟病毒、表达蛋白的结果。
图中横坐标上,1为猪瘟病毒接种PK15细胞,2为表达猪瘟病毒E0蛋白,3 为PK15细胞对照;纵坐标为OD值。
图2:利用本发明的多肽与其它病毒交叉反应的结果。
图中横坐标为不同包被ELISA板细胞培养物的病毒各类;纵坐标为OD值。
具体实施方式
实例1 噬菌体随机肽库的筛选
用纯化表达的CSFV E0蛋白包被聚氯乙烯板,每孔100μl(100μl /ml)包被,置于4℃条件下过夜,用PBST洗涤后再用5%的BSA液封闭。
将稀释后的噬菌体肽库100μl加入到相应的孔中,室温条件下孵肓2h,用TBST液冲洗8-10次,每孔加入洗脱液200μl,室温条件下振荡5-8min,吸出洗脱液并中和至中性。
中和后的洗脱液可以用于滴度测定和下一轮培养;将LB培养后的噬菌体进行离心收集,用于下一轮的筛选。
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