[发明专利]磁珠法提取革兰氏阴性菌基因组的方法在审
申请号: | 201510449617.6 | 申请日: | 2015-07-28 |
公开(公告)号: | CN104975007A | 公开(公告)日: | 2015-10-14 |
发明(设计)人: | 王清水;余彦 | 申请(专利权)人: | 福建师范大学 |
主分类号: | C12N15/10 | 分类号: | C12N15/10 |
代理公司: | 福州君诚知识产权代理有限公司 35211 | 代理人: | 戴雨君 |
地址: | 350007 福建省福*** | 国省代码: | 福建;35 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 磁珠法 提取 革兰氏 阴性 基因组 方法 | ||
技术领域
本发明涉及一种磁珠法提取革兰氏阴性菌基因组的方法,属于生物技术领域。
技术背景
革兰阳性菌、革兰阴性菌是根据对细菌进行革兰氏染色的结果来区分的,如果将细菌作革兰氏染色,凡染后菌体呈紫色的,称“革兰氏阳性菌”,菌体呈伊红色,称“革兰氏阴性菌”。无论阳性菌还是阴性菌都有杆菌和球菌。葡萄球菌、大肠杆菌、绿脓杆菌是临床最为常见的病原菌,葡萄球菌属于革兰阳性球菌,大肠杆菌属于革兰阴性菌中的肠杆菌科,除大肠杆菌以外,临床较常见的肠杆菌科细菌还有变形杆菌、沙门氏菌、克雷白杆菌;绿脓杆菌属于假单胞菌,为非发酵菌,是临床常见的较耐药革兰阴性杆菌。
革兰氏阴性菌是原核生物,构造相对简单,遗传背景清晰,培养操作容易,因此也常常被作为基因工程的对象加以利用:研究者常常将外源基因导入质粒,将质粒整合入革兰氏阴性菌基因,这样,革兰氏阴性菌就能够表达基因重组后的蛋白(例如胰岛素,某些疫苗等)了。此外,革兰氏阴性菌还常常作为模型生物参与细胞学实验。
革兰氏阴性菌分布广泛,是微生物遗传学和分子遗传学重要的研究对象,对革兰氏阴性菌遗传学研究的许多重要发现,加深了我们在分子水平上对生物遗传机制的理解;同时由于我们对革兰氏阴性菌遗传背景有较深的了解,革兰氏阴性菌在基因工程研究中占据着不可替代的重要地位。为了更好地研究革兰氏阴性菌的遗传信息,需要提取革兰氏阴性菌的基因组DNA。研制一种适用于革兰氏阴性菌基因组DNA提取的方便、快捷、实用的方法,解决使用常规方法所获得的DNA样品提取时间长的问题。此外,有效的提取革兰氏阴性菌基因组DNA,能够为进行基因分析与基因克隆提供重要保证,从而丰富基因组学的研究内容。
发明内容:
本发明提供一种磁珠法提取革兰氏阴性菌基因组的方法,与传统方法相比,利用该方法能够方便、快捷地提取革兰氏阴性菌基因组。
磁珠法提取革兰氏阴性菌基因组的方法,包括革兰氏阴性菌细胞的破碎,DNA的游离与杂蛋白的抽除,磁珠法快速纯化基因组DNA,具体步骤如下:
革兰氏阴性菌细胞的破碎:取1.5ml革兰氏阴性菌过夜培养液加到1.5ml离心管中,10000-13000rpm/min离心1-5分钟后弃上清。往菌体沉淀中加入0.5-1ml溶菌酶溶液悬浮沉淀,37℃温育2-4h。加入0.5-1ml SDS溶液,反复颠倒混匀10-20min,10000-13000rpm/min离心10-20分钟后取上清至新的1.5ml离心管。
DNA的游离与杂蛋白的抽除:加入200-600μl酚、氯仿和异戊醇抽提,其中酚:氯仿:异戊醇的体积比为25:24:1,10000-13000rpm/min离心10-20分钟,将上清转移至干净的1.5ml离心管中。加入200-600μl氯仿和异戊醇抽提,其中氯仿:异戊醇体积比为24:1,10000-13000rpm/min离心10-20分钟,将上清转移至干净的1.5ml离心管中。
磁珠法快速纯化基因组DNA:往溶液中加入等体积的Buffer A。震荡10-30s。室温放置1-10min,将离心管放在磁力架上,进行磁珠分离。经观察,待磁珠吸附到离心管一侧时,吸去液体,保留磁珠。往含有磁珠的离心管中加入0.5-1.5ml Buffer B,打匀后室温静止5-10min,将离心管放在磁力架上,进行磁珠分离。经观察,待磁珠吸附到离心管一侧时吸去液体,保留磁珠。往含有磁珠的离心管中加入30-60μl Buffer C,将离心管放在磁力架上,进行磁珠分离。经观察,待磁珠吸附到离心管一侧时吸取液体,此溶液即为革兰氏阴性菌基因组DNA产物。于1%琼脂糖凝胶中电泳检测。
所述的溶菌酶溶液:0.1-0.3mol/L氯化钠(Nacl),0.1-0.2mol/L乙二胺四乙酸(EDTA),10-20mg/ml溶菌酶,PH=7-9。
所述的SDS溶液:0.1-0.2mol/L氯化钠(Nacl),0.1-1mol/L三羟甲基氨基甲烷(Tris),5-20%质量体积比的十二烷基硫酸钠(SDS),PH=7-9。
所述的Buffer A:异丙醇:磁珠混悬液的体积比为24:1,其中磁珠混悬液由磁珠和水按照1:2体积比配置。
所述的Buffer B:4.3-21.4mmol/L三羟甲基氨基甲烷(Tris),2.1-4.2mmol/L乙二胺四乙酸(EDTA),42.9-85.7mmol/L氯化钠(Nacl),60-80%无水乙醇。
所述的Buffer C:5-10mmol/L三羟甲基氨基甲烷(Tris),PH=7.0-9.0。
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