[发明专利]一种诱导博落回胚状愈伤组织产生的培养基及方法有效
申请号: | 201810820292.1 | 申请日: | 2018-07-24 |
公开(公告)号: | CN108849515B | 公开(公告)日: | 2019-11-29 |
发明(设计)人: | 曾建国;余林岚 | 申请(专利权)人: | 湖南美可达生物资源股份有限公司 |
主分类号: | C12N5/04 | 分类号: | C12N5/04;A01H4/00 |
代理公司: | 43217 长沙楚为知识产权代理事务所(普通合伙) | 代理人: | 陶祥琲<国际申请>=<国际公布>=<进入 |
地址: | 410331 湖南省长*** | 国省代码: | 湖南;43 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 培养基 博落回 愈伤组织 胚状 诱导 植物组织培养技术 添加物 体细胞胚胎 外植体选取 诱导胚状体 成苗培养 大棚培养 植物激素 培育基 外植体 再生苗 灭菌 成苗 幼苗 组培 移栽 高产 培育 生产 | ||
1.一种诱导博落回胚状愈伤组织产生植株再生的方法,其特征在于,包括以下步骤:
(1)外植体选取和灭菌:将叶片剪成小块,嫩枝剪切成小段,清洗消毒,备用;
(2)诱导胚状愈伤组织培养:将处理好的叶片、嫩枝接种到培养基一上,暗培养条件下诱导胚状愈伤组织产生;所述培养基一由MS培养基和添加物组成,所述添加物包括2,4-D、IAA、KT和PQQ;所述MS培养基的浓度为4.42g/L;所述2,4-D的浓度为0.2~0.6μmol/L;所述IAA的浓度为4.0~6.5μmol/L;所述KT的浓度为0.2~0.6μmol/L的;所述PQQ的浓度为100~1000nmol/L;
(3)诱导胚状体培养:将步骤(2)得到的愈伤组织转接到培养基二上,暗培养条件下诱导胚状体产生;所述培养基二由MS培养基和GA3组成:所述MS培养基的浓度为4.42g/L;所述GA3的浓度为0.1~0.5μmol/L;
(4)体细胞胚胎萌发:将步骤(3)得到的胚状体转接到培养基三上光暗结合培养;所述培养基三由MS培养基、IAA和KT组成:所述MS培养基的浓度为4.42g/L;所述IAA的浓度为4.0~6.5μmol/L;所述KT的浓度为0.2~0.6μmol/L;
(5)成苗:将步骤(4)萌发的胚状体转接到培养基四上光暗结合培养;所述培养基四由MS培养基和PQQ组成:所述MS培养基的浓度为4.42g/L;所述PQQ的浓度为25~200μmol/L;
(6)再生苗的移栽:步骤(5)将生根苗组培瓶拧开,加入少量水,放置1~2天后移栽到装有炼苗基质的炼苗盒中,进行正常水肥管理;
(7)大棚培养:炼苗盒中炼苗两周后移栽到大棚,进行正常水肥管理。
2.根据权利要求1所述的诱导博落回胚状愈伤组织产生植株再生的方法,其特征在于,步骤(1)首先将叶片剪成边长为8~12厘米的正方形,嫩枝剪切成长度8~12厘米的小段。
3.根据权利要求2所述的诱导博落回胚状愈伤组织产生植株再生的方法,其特征在于,步骤(1)中,用洗洁精清洗剪取的叶片和嫩枝,去除其表面灰尘、绒毛,再用蒸馏水冲洗,在灭菌的超净工作台上用75%乙醇浸润10s,放到0.1%升汞水溶液中浸透8-10min,用无菌水漂洗3~4次;将已经灭菌消毒好的叶片和嫩枝用滤纸吸干水分。
4.根据权利要求3所述的诱导博落回胚状愈伤组织产生植株再生的方法,其特征在于,步骤(1)将已经灭菌消毒好的叶片和嫩枝用滤纸吸干水分后,进一步用剪刀将叶片剪成0.8~1.2cm2大小的正方形,然后用刀片将叶片划伤;嫩枝斜切成长度0.4~0.6cm的小段,备用。
5.根据权利要求1-4任意一项所述的诱导博落回胚状愈伤组织产生植株再生的方法,其特征在于,步骤(2)(3)(4)(5)培养时温度均控制在25±1℃。
6.根据权利要求1-4任意一项所述的诱导博落回胚状愈伤组织产生植株再生的方法,其特征在于,步骤(4)(5)光暗结合培养时光照强度均为1000~3000Lx,光照时间均为16h/d。
7.根据权利要求1-4任意一项所述的诱导博落回胚状愈伤组织产生植株再生的方法,其特征在于,步骤(2)(3)(4)(5)中MS培养基中含有蔗糖30g/L,植物凝胶3g/L,pH5.8。
8.根据权利要求1-4任意一项所述的诱导博落回胚状愈伤组织产生植株再生的方法,其特征在于,步骤(6)炼苗所用基质为:椰糠粉:砂石=1:1,用生根水浇透水,用塑料罩罩住育苗盒,保证育苗盒湿度不低于82%,温度控制25±1℃,光照强度为3000lx,光照时间16h/d条件下培养两周。
9.根据权利要求1所述的诱导博落回胚状愈伤组织产生植株再生的方法,其特征在于,
步骤(2)诱导胚状愈伤组织培养的培养基一中:添加剂2,4-D的浓度为0.5μmol/L;所述IAA的浓度为5.7μmol/L;所述KT的浓度为0.5μmol/L的;所述PQQ的浓度为500nmol/L;
步骤(3)诱导胚状体培养的培养基二中:GA3的浓度为0.3μmol/L;
步骤(4)体细胞胚胎萌发的培养基三中:所述IAA的浓度为5.7μmol/L;所述KT的浓度为0.5μmol/L;
步骤(5)成苗的培养基四中:所述PQQ的浓度为200nmol/L。
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