[发明专利]在微流体通道中的从溶液中分离后的细胞测量

说明书

装置的一个实例，其包括入口以接收悬浮在溶液中的多个细胞。所述装置还包括微流体通道用以输送悬浮在溶液中的所述多个细胞。此外，所述装置包括沿微流体通道设置的捕集器，其中所述捕集器将分离悬浮在溶液中的多个细胞。所述装置还包括缓冲液供给源用以分配缓冲液，从而洗涤所述多个细胞和从微流体通道中除去溶液。装置进一步包括传感器用以测量从溶液中分离后的多个细胞的特性。

背景

分离细胞用于测量可用于各种工业，如生物学和医学。例如，可以计数细胞或可以测量浊度以测定给定体积中的细胞密度。这可在几种不同应用中提供作出评估的能力。例如，细胞测量可应用于抗菌药敏试验，如用于测定最低抑菌浓度。

附图说明

现在仅以举例的方式参考附图，其中：

图1是从混合物中分离细胞并测量特性的一种示例性装置的示意图；

图2是从混合物中分离细胞并测量特性的另一示例性装置的示意图；

图3是正在接收混合物的图2中所示的装置的示意图；

图4是正在分离细胞和培养细胞的图2中所示的装置的示意图；

图5是正在测量特性的图2中所示的装置的示意图；

图6是分离细胞的捕集器(trap)的另一实例的示意图；

图7是从混合物中分离细胞的另一示例性装置的示意图；和

图8是从混合物中分离细胞并测量特性的一种示例性方法的流程图。

详细说明

细胞测量可具有许多应用并可涉及许多技术。例如，细胞测量的一种应用可为在抗菌药敏试验的过程中测定细菌细胞健康，如在抗生素的测试阶段期间测定抗生素的最低抑菌浓度。测定最低抑菌浓度的一种方法涉及将不同浓度的抗生素分配到分开的含细菌的孔中。然后可监测各个孔，如通过观察孔中的浊度。要认识到，通过使用这种方法，可在经过足够的时间(以在孔中生长对可靠的阳性浊度测量而言足够的细胞)后测定最低抑菌浓度，该时间可为大约24至48小时。在另一些实例中，可通过使用光谱技术，如表面增强拉曼光谱法或表面增强红外吸收光谱法直接测量指示细胞健康的生物标志物来进行快速最低抑菌浓度测定。

此外，通过使用光谱技术，如表面增强拉曼光谱法或表面增强红外吸收光谱法，可在微流体或纳流体平台而非常规孔中进行测量。微流体和纳流体平台可用于操作和取样少量胶体、惰性粒子和生物微粒，如红血球、白血球、血小板、癌细胞、细菌、酵母、微生物、蛋白质、DNA等。相应地，在培养出足够样本量方面牵涉的时间较少。此外，用于进行测量的装置可较小。

参考图1，在10处显示从溶液中分离细胞并测量分离的细胞的特性的装置。装置10将接收在溶液中的多个细胞用于分离和测量。在本实例中，装置10包括入口15、微流体通道20、捕集器25、缓冲液供给源30和传感器35。

入口15将接收包括悬浮在溶液中的多个细胞的混合物。所述多个细胞不受限制并可包括几种不同类型的细胞。在本实例中，多个细胞包括多个细菌。特别地，本实例中的细菌可以基本都为相同类型，如在细菌培养物中。在另一些实例中，多个细胞可为其它类型的细胞，如来自动物或人类的细胞。例如，所述多个细胞可包括红血球、白血球、血小板、癌细胞和/或酵母。在进一步实例中，多个细胞也可被其它生物材料取代，所述其它生物材料可为细胞的一部分，如蛋白质、DNA、RNA、外来体和其它生物微粒，或细胞的小集合，如小微生物。