[发明专利]一种鸟苷酸环化酶催化合成环鸟苷二磷酸的方法在审
申请号: | 201910243224.8 | 申请日: | 2019-03-28 |
公开(公告)号: | CN110499323A | 公开(公告)日: | 2019-11-26 |
发明(设计)人: | 黄卫东;郭嘉义;张燕;陈一帆;芦晓红;王银 | 申请(专利权)人: | 宁夏医科大学 |
主分类号: | C12N15/70 | 分类号: | C12N15/70;C12N15/10;C12N9/88;C12P19/36 |
代理公司: | 64104 银川瑞海陈知识产权代理事务所(普通合伙) | 代理人: | 李杰<国际申请>=<国际公布>=<进入国 |
地址: | 750000 宁夏回族*** | 国省代码: | 宁夏;64 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 蛋白 催化酶 基因工程改造 鸟苷酸环化酶 编码蛋白 催化反应 催化合成 蛋白纯化 合成过程 基因序列 诱导表达 重组载体 蛋白体 点突变 野生型 磷酸 得率 构建 酶切 鸟苷 破菌 透析 突变 基因 转化 | ||
1.一种鸟苷酸环化酶催化合成环鸟苷二磷酸的方法,其特征在于:所述方法包含如下步骤:
1)基因序列的获取:利用PCR技术在引物1、引物2的作用下,以铜绿假单胞菌PAO1中的基因组DNA为模板,扩增得到约0.6kb的鸟苷酸环化酶的基因片段;将该片段连接到pET-32a载体上,获得克隆载体pET-PA0847;
2)突变重组载体的构建:根据野生型0847基因的氨基酸序列,选择突变位点,设计点突变表达引物,以步骤1)中的重组质粒pET-PA0847为模板,通过PCR扩增得到了突变的鸟苷酸环化酶基因;突变鸟苷酸环化酶基因克隆于表达载体pET-32a,构建了含有0847点突变鸟苷酸环化酶基的表达重组载体pET-PA0847-I;
3)酶切:对上述载体进行转化并提取质粒,提取出的质粒使用双酶切进行验证,使用的限制性核酸内切酶为BamHI及HindIII,进行酶切操作,琼脂糖凝胶电泳;
4)转化:将表达重组质粒pET-0847及pET-PA0847-I转化至大肠杆菌中,获得含有表达重组质粒pET0847及pET0847-I的重组大肠杆菌BL21菌株BL21-0847及BL21-0847-I;
5)诱导表达:将经验证后的含有重组质粒的转化大肠杆菌BL21菌株BL21-0847及BL21-0847-I,用含有100μg/ml氨苄霉素的LB培养液,培养到菌体浓度OD600为0.5-1.5,收集含有重组鸟苷酸环化酶的菌体细胞;
6)破菌收集蛋白:对获得的含有表达重组蛋白的大肠杆菌菌体超声波破碎,超声波破碎后离心4℃、8000rpm离心10min;
7)蛋白纯化:对诱导后的菌液经收菌、重悬、超声破碎、分离上清与沉淀、纯化上清等操作,以获得纯化后的体外蛋白;
收菌:将诱导后的细菌于6000rpm,4℃,15min,收集菌液;
重悬:将收集后的菌液使用缓冲液进行重悬,其中缓冲液Tris-NaCl的组成为:Tris-0.02M,NaCl-0.1M,pH=7.6;
超声破碎:使用超声破碎仪在强度50,最高温度37℃,5s-3s间隔,时间15min的条件下,超声两次,以彻底破碎细菌;
分离上清与沉淀:将破碎后的菌液于12000rpm,4℃,30min,分离上清与沉淀;上清置于4℃冷藏并尽快纯化;纯化上清:将含目的蛋白的上清进行Ni-NTA亲和纯化带组氨酸标签蛋白的纯化操作,所需试剂:
Binding buffer:50mMNaH2PO4,300mMNacl,10mM咪唑,pH8.0
Washing buffer:50mMNaH2PO4,300mMNacl,20mM咪唑,pH8.0
Elution buffer:50mMNaH2PO4,300mMNacl,250mM咪唑,pH8.0;
8)蛋白透析:对纯化收集的目的蛋白溶液,于透析袋中透析,所述透析袋的分子量为8000~14000;所述透析液为:20mM Tris-HCl,pH8.0,50mM NaCl,加水至1000mL,置于4℃的冰箱中,磁力搅拌器透析过夜;
9)采用BCA法测定蛋白浓度;
10)收集透析后的蛋白溶液,进行蛋白体外催化反应。
2.根据权利要求1所述的一种鸟苷酸环化酶催化合成环鸟苷二磷酸的方法,其特征在于:所述步骤1)中的引物1,其序列为:PA0847Gexpfor:5’—agaggatcccagatcgcctaccagcagcaattg—3’。
3.根据权利要求1所述的一种鸟苷酸环化酶催化合成环鸟苷二磷酸的方法,其特征在于:所述步骤1)中的引物2,其序列为:PA0847Gexprev:5’—tagcaagctttcaggctggcgcctggtacagg—3’。
4.根据权利要求1所述的一种鸟苷酸环化酶催化合成环鸟苷二磷酸的方法,其特征在于:所述步骤3)中的酶切体系为20ul酶切体系,具体为:
内切酶1ul+内切酶1μL
10×buffer 2μL
质粒DNA 8μL
ddH2O 7.5μL
BSA 0.5μL。
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