[发明专利]一种环状促红素衍生肽在肾损伤和环孢素A损伤保护中的应用在审
申请号: | 202010740606.4 | 申请日: | 2020-07-27 |
公开(公告)号: | CN112076309A | 公开(公告)日: | 2020-12-15 |
发明(设计)人: | 张玉芳;杨斌 | 申请(专利权)人: | 南通大学;南通大学附属医院 |
主分类号: | A61K38/12 | 分类号: | A61K38/12;A61K49/00;A61K48/00;A61P13/12;G01N33/573;G01N33/58;G01N33/68;C12Q1/6851;C12N15/88;G01N1/30;G01N21/84 |
代理公司: | 南京经纬专利商标代理有限公司 32200 | 代理人: | 钱超 |
地址: | 226019 *** | 国省代码: | 江苏;32 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 环状 促红素 衍生 损伤 环孢素 保护 中的 应用 | ||
1.一种环状促红素衍生肽在肾损伤和环孢素A损伤保护中的应用。
2.根据权利要求1所述的一种环状促红素衍生肽在肾损伤和环孢素A损伤保护中的应用,其特征在于步骤为:
第一步:建立小鼠肾损伤模型:将25-30g的雄性BALB/c小鼠随机分为5组,每组6只,即n=6,其中对照组:暴露腹腔和肾蒂,以0.01 ml/g的1%戊巴比妥进行麻醉; IR组:分离两个肾蒂,用血管钳将其夹闭30分钟使肾脏变色,随后放开血管钳,使血液再灌注2或8周;IR +CsA组:将2 mg CsA溶于1 ml橄榄油中,按35mg/kg体重的标准每天给IR组小鼠灌胃;IR +CHBP组:将 0.11 mg CHBP溶于32ml 0.9%的生理盐水中,按24 nmol/kg体重的标准对IR组小鼠腹腔注射,每3天一次;IR + CsA + CHBP组:用CsA每天灌胃和CHBP每3天一次同时治疗IR组小鼠;
第二步:使用代谢笼在第2、4、6和8周收集尿液样本,在2或8周时,处死动物,收集血液样本和肾脏样本,肾脏样本用10%(w/v)中性福尔马林缓冲液固定,在液氮中速冻后保存在-80℃备用,尿液样本使用自动生化分析仪测量尿白蛋白/肌酐,血液样本使用自动生化分析仪测量血清肌酐(SCr);
第三步:肾脏样本石蜡包埋切片,切片用苏木精和伊红(HE)染色,肾小管间质损害(TID)程度的半定量评估分为0-4分:损伤区域的百分比小于5%得0分;5%-25%得1分;25%-50%得2分;50%-75%得3分;超过75%得4分;评估参数包括肾小管腔内的肾小管扩张和空泡,间质扩张,炎性细胞浸润,蛋白管型,管腔内细胞或细胞碎片;每张切片在200x放大倍率下随机选择12个皮层视野进行评分;
第四步:Masson三色染色,检测了肾小管间质纤维化,每张切片在400x放大倍率下随机选择20个皮层视野,使用Image-Pro Plus软件扫描评估胶原沉积;
第五步,切片使用ApopTag过氧化物酶试剂盒用末端脱氧核苷酸转移酶(TdT)原位标记片段化DNA (ISEL):将切片在37℃下用40 µg/mL蛋白酶K消化15分钟,然后在37℃下与TdT和异羟基洋地黄毒苷-dUTP一起孵育60分钟,加入异羟基洋地黄毒苷-过氧化物酶复合物30分钟后,将切片用3'-氨基-9-乙基咔唑(AEC)底物显影,在200x视野中选择20个视野检测小管、管腔和间质区的凋亡细胞;
第六步,蛋白质印迹分析:制备25微克的肾脏蛋白在12-15%的聚丙烯酰胺变性凝胶上分离,并将其转印到PVDF膜上,在用caspase-3抗体,HMGB1抗体,内参β- actin孵育之前,用5%牛奶封闭,用过氧化物酶偶联的二抗孵育后,使用分子成像器Chemi Doc XRS +系统扫描显影,并通过Image Lab软件进行半定量分析;
第七步,实时定量PCR:通过逆转录(RT)实时定量多聚酶链反应(qPCR)在StepOne Plus实时PCR系统中检测肾脏和TCMK-1细胞中的Caspase-3 mRNA,Caspase-3和管家基因GAPDH的探针被6-羧基荧光素(FAM)标记,用Trizol试剂提取的2μg总RNA用于逆转录成cDNA,用Taq聚合酶在qPCR反应缓冲液中扩增2μl cDNA,其中含有900 nM正向、反向引物和250 nM探针的反应体系在95℃下10分钟,随后在95℃下15秒和60℃ 1分钟进行40个循环,将正常组作为对照,GAPDH作为矫正,使用2-ΔΔCt方法计算caspase-3 mRNA的表达;
第八步,蛋白芯片分析:蛋白芯片试剂盒中蛋白芯片利用50 µg蛋白同时检测18种磷酸化或裂解的信号分子,根据芯片使用说明,通过将载玻片短暂暴露于分子成像系统来获取图像,并使用Alpha View软件3.3,通过扫描体积密度进行半定量分析;
第九步,TCMK-1细胞培养:在含有10%胎牛血清,100单位/毫升青霉素G和100μg/ml链霉素的DMEM/F12培养基中培养TCMK-1细胞,在有/无CHBP的条件下,细胞长融合至60-70%时用CsA持续处理24小时,使用Lipofectamine @ RNAiMAX将Caspase-3 siRNA转染到TCMK-1细胞中,双链CASP-3siRNA的序列为: 5'-GCUUCUUCAGAGGCGACUAtt-3'和5'-UAGUCGCCUCUGAAGAAGCta -3',其中阴性对照siRNA未靶向任何已知的哺乳动物基因,将siRNA转染的细胞培养4-6小时,在有/无CHBP处理的细胞中加入CsA;
第十步,流式细胞仪测定细胞凋亡:收集帖壁的TCMK-1细胞,将细胞沉淀重悬于缓冲液中,并与annexin-V和PI避光孵育15分钟,将仅孵育annexin-V或PI以及无染料组为对照,通过BD FACS Calibur流式细胞仪,使用Cell Quest研究软件,对样品进行分析,计数10000个细胞,结果象限点图显示:存活细胞(Annexin V-/PI-),早期凋亡细胞(Annexin V +/PI-),晚期凋亡细胞(Annexin V +/PI +)或坏死细胞(Annexin V-/PI +),每种类型的细胞数均表示为总门控细胞的百分比;
第十一步,统计分析:使用GraphPad Prism 6.0软件进行统计分析,数据表示为平均值±平均值的标准误(SEM),使用方差分析(ANOVA)来比较三组或更多组之间的结果,使用双侧t检验来比较两组之间的结果,P≤0.05被认为具有统计学意义,来自细胞培养研究的所有数据代表至少三个独立的实验。
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