[发明专利]检测磷酸化tau蛋白配对单克隆抗体制备方法在审
申请号: | 202110212920.X | 申请日: | 2021-02-25 |
公开(公告)号: | CN112979800A | 公开(公告)日: | 2021-06-18 |
发明(设计)人: | 张磊;缪连军 | 申请(专利权)人: | 安徽环球基因科技有限公司 |
主分类号: | C07K16/18 | 分类号: | C07K16/18;C07K16/44;C07K1/14;C12N15/06;C12N5/20 |
代理公司: | 合肥正则元起专利代理事务所(普通合伙) 34160 | 代理人: | 刘生昕 |
地址: | 239000 *** | 国省代码: | 安徽;34 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 检测 磷酸化 tau 蛋白 配对 单克隆抗体 制备 方法 | ||
1.检测磷酸化tau蛋白配对单克隆抗体制备方法,其特征在于,包括如下步骤:
第一步、动物免疫及筛选方法的建立,包括动物免疫、细胞筛选条件的优化和效价检验;
第二步、杂交瘤细胞株的制备,包括骨髓瘤细胞的准备、饲养细胞的准备、脾细胞的准备、细胞融合、杂交瘤细胞的筛选和杂交瘤细胞的克隆化培养;
第三步、杂交瘤细胞的扩大培养及冻存;
第四步、单克隆抗体的批量制备;
第五步、单克隆抗体的纯化;
第六步、单克隆抗体的鉴定,包括腹水及抗体效价测定、抗体亚类鉴定、抗体配对实验。
2.根据权利要求1所述的检测磷酸化tau蛋白配对单克隆抗体制备方法,其特征在于,动物免疫及筛选方法的建立包括如下步骤:
步骤S11、动物免疫:取人工合成偶联载体蛋白的p-tau-181多肽和未磷酸化tau重组蛋白加入等量弗氏完全佐剂混匀,充分乳化,50μg/只的剂量分别免疫Balb/c小鼠,背部皮下多点注射;第3周进行第二次免疫,取人工合成偶联载体蛋白的p-tau-181多肽和未磷酸化tau重组蛋白加入等量弗氏不完全佐剂混匀,充分乳化,25μg/只免疫Balb/c小鼠,背部皮下多点注射;每次免疫间隔2周,最后一次无佐剂完全抗原腹腔注射加强免疫一次;
步骤S12、细胞筛选条件的优化:采用间接ELISA检测法,以p-tau-181多肽和tau重组蛋白过量包被1.0μg/mL聚苯乙烯反应板,辣根过氧化酶标记的羊抗小鼠IgG作为二抗,梯度稀释酶标二抗,确定酶最佳工作浓度,然后以最佳酶稀释度进行测定;
步骤S13、效价检验:用建立的间接ELISA方法测定免疫小鼠的血清抗体效价;选取效价最高的免疫小鼠,腹腔注射加强免疫一次,三日后摘取小鼠脾脏进行细胞融合。
3.根据权利要求1所述的检测磷酸化tau蛋白配对单克隆抗体制备方法,其特征在于,杂交瘤细胞株的制备,包括如下步骤:
步骤S21、骨髓瘤细胞的准备:
于融合前两周复苏骨髓瘤细胞:将冻存管自液氮中取出,立即放到37℃温水中,用DMEM培养液轻轻混悬,混匀后加入细胞培养瓶中,置37℃、含5%CO2培养箱中进行传代培养;培养过程中在培养液中加入8-氮鸟嘌呤,每日处理1次,连续处理3次,传至8瓶,并使融合当日的骨髓瘤细胞处于对数生长期,备用;
步骤S22、饲养细胞的准备:
细胞融合当日准备饲养细胞:取一只12-16周龄健康Balb/c小鼠,摘眼球取血,制备阴性血清;断颈处死,用体积分数75%的酒精消毒处理;将小鼠置于超净工作台中,腹面向上,用镊子提起小鼠腹部皮肤,在下腹部剪一小口,纵向剥离,充分暴露腹膜,并用酒精消毒;用一次性灭菌注射器抽取5mL的HAT培养液注入小鼠腹腔内,右手注射器保持不动,轻摇小鼠,随后抽取细胞悬液;将细胞悬液加入60mL的HAT培养基中,混匀后计数,调整细胞浓度至1×105-5×105个/mL;按100μL/孔转入到96孔细胞培养板中,置37℃、含5%CO2培养箱中培养备用;
步骤S23、脾细胞的准备:
选取ELISA检测效价最高的免疫小鼠,腹腔注射追加免疫一次,三日后对该鼠摘眼球取血,制备阳性血清;断颈处死,体积分数75%的酒精腹部消毒,在超净工作台内,无菌摘取脾脏,去除脂肪和结缔组织,置于200目灭菌金属网上,用灭菌玻璃注射器芯轻轻研磨脾脏,同时缓慢滴加无血清DMEM培养液;收集脾细胞悬液,并转移到50mL离心管中,以1000r/min离心5min,弃去上清,重悬于5mL无血清DMEM培养液中,脾细胞计数后备用;
步骤S24、细胞融合:
利用聚乙二醇对免疫小鼠脾细胞和Sp2/0进行融合,选择状态良好且呈对数生长的Sp2/0细胞6-8瓶,将细胞从瓶壁上轻轻吹打下来并转移到50mL离心管中,以1000r/min离心10min,弃去上清,用5mL无血清DMEM培养液悬浮,普通光学显微镜下用细胞计数板计数;将Sp2/0细胞和免疫脾细胞悬液混匀,脾细胞数与骨髓瘤细胞数的比例应维持在5:1到10:1之间;以1000r/min离心10min,弃去上清;轻轻弹击融合管底,使细胞块松散;用滴管往管中缓慢加入1mL37℃预热的50%聚乙二醇,60S内加完,静置90S;在5min内先慢后快逐滴加入37℃预热的无血清DMEM培养液,共加10mL,轻摇混匀后,以1000r/min离心10min,弃去上清;用HAT培养液重悬细胞,随即移入60mL的HAT培养液中,轻轻混匀,然后按100μL/孔转入96孔细胞培养板中,置37℃、含5%CO2培养箱中培养;
步骤S25、杂交瘤细胞的筛选:
融合后注意观察杂交瘤细胞生长状况,第六日用HAT培养液进行第1次半量换液,第8-10日左右,待细胞长到孔底的1/4-1/3时吸出上清进行间接ELISA检测;以S/N≥2.1作为阳性判断标准,用Sp2/0细胞培养上清及正常小鼠血清作阴性对照,免疫阳性血清作阳性对照;用包被缓冲液将p-tau-181多肽和tau重组蛋白稀释至1μg/mL分别包被酶标板中,每孔100μL,37℃温育2h,洗板3次,加入封闭液37℃温育2h,洗板待用;加入杂交瘤细胞培养上清100μL,用三次免疫后的小鼠血清1:1000稀释做阳性对照,用无血清的DMEM及正常小鼠血清作阴性对照,37℃反应30min洗板3次,加入100μL羊抗鼠酶标二抗,反应30min后洗板3次,加入100μLTMB显色液37℃温育10min,加入50μL终止液,450nm测定吸光度,cutoff值等于2.1×阴性值;
步骤S26、杂交瘤细胞的克隆化培养:
制备饲养细胞;HT培养液中制备饲养细胞层100μL/孔;用移液器将ELISA检测具有特异性反应的阳性杂交瘤细胞轻轻吹打混匀,取样,细胞计数,然后用HT培养液调整细胞数;首次亚克隆时调整细胞数至15-20个/mL,第二、第三次亚克隆时调整细胞数至10个/mL;将杂交瘤细胞悬液接种于含饲养细胞层的96孔细胞培养板中,100μL/孔、置37℃、含5%CO2培养箱中进行培养;每日观察并记录每孔细胞克隆数,待细胞长到孔底的1/4-1/3时半量换液,并对细胞上清进行间接ELISA检测;选择克隆数少、吸光度450nm值高的阳性孔,将其再次克隆;经3-4次克隆化操作,直至所有克隆化细胞孔检测阳性率达100%时,即可确定获得分泌特异性单抗的杂交瘤细胞株。
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