[发明专利]重组人纤连蛋白及其制备、活性测定和稳定性实验方法在审
申请号: | 202110695526.6 | 申请日: | 2021-06-23 |
公开(公告)号: | CN113480636A | 公开(公告)日: | 2021-10-08 |
发明(设计)人: | 刘传玉;王曼宇;李泽鹏;李晓晖;张俊梅 | 申请(专利权)人: | 烟台科瑞斯生物技术有限责任公司 |
主分类号: | C07K14/78 | 分类号: | C07K14/78;C07K1/22;C12N15/12;C12N15/70;G01N21/31 |
代理公司: | 济南泉城专利商标事务所 37218 | 代理人: | 张贵宾 |
地址: | 264000 山东省*** | 国省代码: | 山东;37 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 重组 人纤连 蛋白 及其 制备 活性 测定 稳定性 实验 方法 | ||
1.一种重组人纤连蛋白(rhFN),其特征在于,其氨基酸序列如SEQIDNO.1所示。
2.如权利要求1所述的一种重组人纤连蛋白的制备方法,其特征在于,所述制备方法具体包括以下步骤:
S1:表达;将重组质粒rhFN-pET28a(+)转入大肠杆菌BL21(DE3),获得阳性基因工程菌BL21(DE3)/pET28a-rhFN;经卡那霉素抗性LB平板筛选的阳性转化子,接种至10mL卡那霉素抗性LB培养基中过夜培养;
S2:诱导;次日进行转接,培养至对数生长期加入诱导剂IPTG进行诱导发酵,20℃诱导16小时,离心收集菌体;
S3:鉴定;S2的诱导过程中对未诱导菌液、诱导完成的菌液分别取样1.5mL,4℃、12000×g、5min离心收集菌体,1.5mLPBS复溶菌体,将菌体进行低温超声破碎,超声完成后,4℃、12000×g、5min离心分离上清及沉淀,用1.5mLPBS复溶沉淀;取未诱导菌液、诱导菌液、破碎离心上清、破碎离心沉淀样品各32μL,加入5×蛋白上样缓冲液,SDS-PAGE鉴定蛋白的表达情况;
S4:纯化;使用AKTA纯化仪,连接Ni-NTA柱,采用分步洗脱的方法进行纯化,低温破碎菌体,离心收集上清,经亲和层析纯化得到重组人纤连蛋白;
S5:去除毒素;使用AKTA纯化仪,连接PMB柱除细菌内毒素。
3.根据权利要求2所述的一种重组人纤连蛋白的制备方法,其特征在于,所述步骤S2中的具体步骤如下:次日按照终OD为0.04转接到700mLLB/瓶培养基中培养至OD600达到0.6~0.8,加入终浓度为0.5mmol/L的异丙基硫代半乳糖苷(IPTG)进行诱导发酵,IPTG为诱导剂,20℃诱导16小时,4℃、大于等于3000×g、40min离心收集菌体,得到菌泥,菌泥获得量为3g/L。
4.根据权利要求2所述的一种重组人纤连蛋白的制备方法,其特征在于,所述步骤S4中的具体步骤如下:
S41:菌泥进行重悬,重悬后使用超声破碎仪或高压均质仪破碎菌悬液;
S42:破碎后的悬液加入到离心管中,平衡重量后,4℃、大于等于25000×g、30min,离心收集上清;
S43:离心后的菌液上清使用抽滤装置进行过滤,经过0.22μm滤膜过滤后作为蛋白原液进行后续试验;
S44:连接好AKTA和Ni-NTA柱,使用5-10倍柱体积的超纯水冲洗柱子,流速为柱料能承受最大流速的50%-80%;
S45:待流穿液电导值接近0且紫外吸收值无明显变化后,使用5-8倍柱体积的A液平衡柱子,直至流穿液电导值和紫外吸收值均达到稳定不变为止,流速为柱料能承受的最大流速的30%-50%;
S46:平衡好柱子后开始上样,流速为柱料能承受的最大流速的10%-30%,若蛋白原液体积较小而浓度较高,应适当减少流速或增加重复上样次数,当流穿液的紫外吸收值开始变化时,收集上样流穿液并取样进行SDS-PAGE电泳;
S47:上样完毕后,继续使用A液进行平衡,直至流穿液电导值和紫外吸收值接近上样前数值且稳定后,停止平衡;平衡流速为柱料能承受最大流速的30%-50%;
S48:柱子达到平衡后,采用分步洗脱的方式进行洗脱;第一步使用2%B和98%A进行洗脱,洗脱时流速为柱料能承受最大流速的30%-50%;在紫外吸收值开始出现变化时收集洗脱液,并取样进行SDS-PAGE电泳;
S49:当步骤S48中第一步洗脱时的紫外吸收值不再变化时,使用5%B和95%A进行第二步洗脱,洗脱时的流速为柱料能承受最大流速的30%-50%,在紫外吸收值开始出现变化时收集洗脱液,并取样进行SDS-PAGE电泳;
S410:当步骤S49中第二步洗脱时的紫外吸收值不再变化时,使用30%B和70%A进行第三步洗脱,洗脱时的流速为柱料能承受最大流速的30%-50%,在紫外吸收值开始出现变化时收集洗脱液,并取样进行SDS-PAGE电泳;S411:当步骤S410中第三步洗脱时的紫外吸收值不再变化时,使用100%B进行柱冲洗,洗去仍未洗下的蛋白;洗脱时的流速为柱料能承受最大流速的30%-50%;
S412:使用ClinXImageAnalysis对SDS-PAGE电泳结果进行灰度分析,计算蛋白纯度;
S413:纯化后蛋白使用紫外分光光度计进行浓度测定;
S414:纯化后的蛋白使用PALL30KD超滤管进行浓缩换液;离心程序为4℃,3800×g,4min,更换缓冲液为PBS,pH7.4;浓缩后蛋白再次使用紫外分光光度计进行浓度测定;
S415:浓缩后的蛋白取一部分进行稳定性试验,均分为两份,一份添加2%~5%终浓度的海藻糖和甘露醇,一份不添加任何保护剂,0.22μm滤器过滤除菌后放置于4℃冰箱过夜保存,第二天进行浓度测定。
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