[发明专利]一种具有Cupin结构功能域的贮藏蛋白类型α-淀粉酶抑制剂的生产和纯化方法有效
申请号: | 201510230195.3 | 申请日: | 2015-05-07 |
公开(公告)号: | CN104862330B | 公开(公告)日: | 2018-05-01 |
发明(设计)人: | 麻浩;王占奎;王爽;克玉木·米吉提;王泽;顾爱星;张桦 | 申请(专利权)人: | 南京农业大学 |
主分类号: | C12N15/70 | 分类号: | C12N15/70;C12N15/29;C07K14/415;C07K1/36;C07K1/34;C07K1/22 |
代理公司: | 南京天华专利代理有限责任公司32218 | 代理人: | 傅婷婷,徐冬涛 |
地址: | 211225 江苏省南京市溧*** | 国省代码: | 江苏;32 |
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摘要: | 本发明公开了一种具有Cupin结构功能域的贮藏蛋白类型α‑淀粉酶抑制剂的生产和纯化方法;包括(1)原核表达体系构建及菌液培养诱导表达;(2)原核表达可溶性蛋白纯化;和/或(3)原核表达包涵体蛋白纯化及蛋白复性。目前,经过多次反复实验证明,采用本发明工艺流程,对此种α‐淀粉酶抑制剂进行工艺生产,得到的蛋白产量高、纯度高,生产工艺简单方便,生产周期短,无需价格昂贵设备,是一种适合于此α‐淀粉酶抑制剂生产纯化的优良生物工艺方法。 | ||
搜索关键词: | 一种 具有 cupin 结构 功能 贮藏 蛋白 类型 淀粉酶 抑制剂 生产 纯化 方法 | ||
【主权项】:
一种具有Cupin结构功能域的贮藏蛋白类型α‑淀粉酶抑制剂的生产和纯化方法,其特征在于包括以下步骤(1)和选自步骤(2)和步骤(3)中的一项或两项:(1)原核表达体系构建及菌液培养诱导表达:将Q9SMJ4蛋白的ORF克隆至原核表达载体,并构建Q9SMJ4蛋白大肠杆菌原核表达体系;培养Q9SMJ4蛋白大肠杆菌原核表达体系,并诱导目的蛋白表达;其中所述的原核表达载体含有His标签蛋白编码基因;(2)原核表达可溶性蛋白纯化:a.每50mL培养菌液收集的菌体用缓冲液1 10mL重悬菌体,并加入170μL 35%的TritonX‑100和100μL 100mM的PMSF;b.将重悬菌液置于冰上,超声破碎直至菌液变得澄清透明,超声条件为超声破碎3s,冷却5s,功率为400瓦特;c.将超声破碎过的菌液12000rpm,4℃离心15min,收集上清,弃沉淀;d.将含有His标签蛋白的上清液加入Ni柱中,控制流速0.5‑1.0mL/min,直至上清液完全流过Ni柱,上样量:柱体积(v/v)比例最大为15:1;e.用8倍柱体积的缓冲液2冲洗Ni柱或直至A280值达到稳定,流速控制为1.0mL/min;f.洗脱His标签表达蛋白采用梯度洗脱方式,每一梯度洗脱体积为4个柱体积,收集各个梯度洗脱蛋白;g.通过SDS‑PAGE电泳检测上一步中各洗脱梯度洗脱蛋白纯度,确定收集成份单一、杂质较少且蛋白分子量与目的蛋白相符合的蛋白洗脱组分;h.将收集的洗脱蛋白液装入截留分子量为3600Da的透析袋中,放入超纯水中透析24h除盐,期间晃动透析袋并更换超纯水;i.将透析结束的透析袋放入40%(w/v)的PEG 6000溶液中浓缩至适当体积,即为原核表达并纯化收集的Q9SMJ4可溶性蛋白溶液;其中,所述的缓冲液1为50mM NaH2PO4、300mM NaCl,pH=8.0;所述的缓冲液2为50mM NaH2PO4、300mM NaCl、10mM咪唑,pH=8.0;步骤f使用的洗脱液为50mM NaH2PO4、300mM NaCl,pH=8.0,咪唑浓度分别为50、100、150、200、250mM;(3)原核表达包涵体蛋白纯化及蛋白复性:a.每50mL培养菌液收集的菌体用pH=8.0、0.1M磷酸缓冲液10mL重悬菌体;b.将重悬菌液置于冰上,超声破碎直至菌液变得澄清,超声条件为超声破碎3s,冷却5s,功率为400瓦特;c.将超声破碎过的菌液12000rpm,4℃离心10min,收集沉淀,弃上清;d.用pH=8.0、0.1M磷酸缓冲液洗涤沉淀一次,12000rpm,4℃离心10min,收集沉淀;e.用10mL溶解液溶解沉淀,在室温下孵育1‑2h,期间不断摇晃溶液,使沉淀溶解完全;f.12000rpm,4℃条件下离心30min,收集上清液,弃沉淀不溶物;g.用8倍柱体积缓冲液3平衡Ni柱,控制流速为0.5‑1.0mL/min;h.将步骤f中收集到的含有His标签蛋白的上清液加入Ni柱中,控制流速0.5‑1.0mL/min,直至上清液完全流过Ni柱,上样体积:柱体积比例最大为15:1;i.用4倍柱体积缓冲液3再次平衡Ni柱,控制流速0.5‑1.0mL/min;j.用2倍柱体积的缓冲液4冲洗Ni柱或直至A280值达到稳定,流速控制为1.0mL/min;k.用6倍柱体积的缓冲液5洗脱包涵体蛋白流速控制为1.0mL/min;l.SDS‑PAGE电泳检测上一步中洗脱蛋白纯度及纯化效果;m.在4℃条件下将洗脱收集到的包涵体蛋白自然复性,向溶液中慢慢加入超纯水,使溶液中脲浓度进行梯度稀释;n.将复性结束的蛋白溶液装入截留分子量为3600Da的透析袋中,放入超纯水中透析24小时除盐,期间晃动透析袋并更换超纯水;将透析结束的透析袋放入40%(w/v)的PEG 6000溶液中浓缩至适当体积,即为原核表达纯化收集并复性的Q9SMJ4包涵体蛋白溶液;其中,所述的溶解液为100mM NaH2PO4、10mM Tris‑HCl、100mM DTT、8M脲,pH=8.0;所述的缓冲液3为100mM NaH2PO4、10mM Tris‑HCl、8M脲,pH=8.0;所述的缓冲液4为100mM NaH2PO4、10mM Tris‑HCl、8M脲、10mM咪唑,pH=8.0;所述的缓冲液5为100mM NaH2PO4、10mM Tris‑HCl、8M脲、200mM咪唑,pH=8.0;步骤m中脲浓度进行稀释的梯度为8M‑6 M‑4 M‑2 M‑1 M‑0.1M,每一梯度持续时间为1h。
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