[发明专利]一种高生长速率的隐甲藻突变株的构建方法有效
申请号: | 201610076812.3 | 申请日: | 2016-02-03 |
公开(公告)号: | CN105602982B | 公开(公告)日: | 2019-10-18 |
发明(设计)人: | 刘璐;刁进进;陈磊;张卫文 | 申请(专利权)人: | 昆明藻能生物科技有限公司 |
主分类号: | C12N15/79 | 分类号: | C12N15/79 |
代理公司: | 昆明今威专利商标代理有限公司 53115 | 代理人: | 赛晓刚 |
地址: | 650108 云南省昆明市高新区科发路139号*** | 国省代码: | 云南;53 |
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摘要: | 本发明公开一种高生长速率的隐甲藻突变株的构建方法,具有高生长速率的微藻隐甲藻ATCC 30556基因删除突变株的方法。其特征是包含如下步骤:(1)隐甲藻光合作用相关基因核酮糖1,5‑二磷酸羧化酶/加氧酶Rubisco基因的克隆;(2)用于同源双交换整合的基因片段的构建;(3)Rubisco基因的删除和突变株的构建;(4)隐甲藻Rubisco基因删除突变体生长特性的比较分析。利用本发明的方法定点敲除隐甲藻的Rubisco基因,能够获得异养培养条件下具有高生长速率的隐甲藻突变株,为二十二碳六烯酸(DHA)高效发酵菌种的优化筛选提供了一种新方法。 | ||
搜索关键词: | 一种 生长 速率 隐甲藻 突变 构建 方法 | ||
【主权项】:
1.一种高生长速率的隐甲藻突变株的构建方法,其特征是包含如下步骤:1) 隐甲藻光合作用相关基因核酮糖1,5‑二磷酸羧化酶/加氧酶Rubisco的克隆:采用NCBI数据库中的登记号为EB086308.1的隐甲藻Rubisco序列设计上游引物和下游引物,以隐甲藻的cDNA为模板进行PCR,纯化目的片段,连入pTZ57R/T载体并测序;2)用于同源双交换整合的基因片段的构建:① 隐甲藻Rubisco基因上游片段的扩增:利用隐甲藻基因组为模板,以Rubisco基因上游片段的上游引物、下游引物进行PCR,将PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳,经DNA纯化试剂盒纯化,获得隐甲藻Rubisco基因的上游片段;② 隐甲藻Rubisco基因下游片段的扩增:利用隐甲藻基因组为模板,以Rubisco基因下游片段的上游引物、下游引物进行PCR,将PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳,经DNA纯化试剂盒纯化,获得隐甲藻Rubisco基因的上游片段;③ 潮霉素抗性基因片段的扩增:以pCAMBIA1301植物表达载体为模板,hpt上下游引物进行PCR,将PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳,经DNA纯化试剂盒纯化,获得潮霉素抗性基因片段;④用于同源双交换删除Rubisco基因的DNA片段的构建:以隐甲藻Rubisco基因上游片段、隐甲藻Rubisco基因下游片段、以及含有hpt基因的DNA片段模板,进行融合PCR,将PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳,经DNA纯化试剂盒纯化,获得目的片段;3)Rubisco基因的的删除和突变株的构建:① 隐甲藻感受态细胞的制备:取隐甲藻悬浮培养48 h的细胞10 mL,4 °C, 3500 rpm离心5 min,弃上清,加入1 mL 25 mM DTT溶液,30 °C水浴15 min,离心5 min,弃上清,10 mL 1 M 山梨糖醇(sorbitol)清洗细胞三次,1 mL 山梨糖醇重悬细胞备用;② 隐甲藻感受态细胞的转化:在无菌条件下取200 μL 隐甲藻感受态细胞置于2 mm电极杯中,加入1 μL 鲑鱼精DNA和2 μg 目的片段混匀,冰浴5 min,电击转化条件为2.0 kV,电阻200 Ω,电容25 μF,电击之后冰浴5 min,加入2 mL新鲜液体C9N2培养基,25 °C,180 rpm震荡复苏48 h,取50 μL细胞悬浮液均匀涂布在含有40 mg/L潮霉素B的固体C9N2培养基平板上,倒置培养2周,将平板上长出的单克隆细胞挑出,重新在潮霉素B的抗性平板上划线,进行转化子的复筛,待长出单克隆细胞,转接液体培养,并进行突变体鉴定;4) 删除突变体的分子生物学鉴定:分别提取野生型和突变株隐甲藻细胞的基因组,以hpt基因上下游引物进行PCR,将PCR产物进行琼脂糖凝胶电泳;5) 删除突变体的生长特性分析:在C27N7.5的液体培养基中培养,摇床设置参数为转速180 rpm,温度25 °C;步骤为:接种时取OD490 nm为0.8的新鲜细胞5 mL加入20 mL培养基中,每组做三个平行样,用UV‑1750分光光度计测定波长为490 nm下的吸光值,每12 h测量一次,绘制柱状图;可以观察到在液体培养基C27N7.5中,突变株的生长速率比野生株要快;所述步骤2)中④所述获得目的片段是指上游片段、潮霉素B抗性片段、下游片段的一个完整融合PCR产物;所述步骤3)中②所述新鲜液体C9N2培养基是由葡萄糖9 g、酵母浸粉2 g、海盐25 g,加水至1 L而成;所述步骤3)中②所述含有40 mg/L潮霉素B的固体C9N2培养基是由葡萄糖9 g、酵母浸粉2 g、海盐25 g、琼脂粉15 g,加水至1 L而成;所述步骤5)中所述C27N7.5液体培养基是由葡萄糖27 g、酵母浸粉7.5 g、海盐25 g,加水至1 L而成。
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