[发明专利]双抗体夹心酶联免疫分析试剂盒及其生产方法

说明书

技术领域

本发明属于酶联免疫分析(ELISA)技术领域，具体的说是一种双抗体夹心酶联免疫分析试剂盒及其生产方法。

背景技术

酶联免疫分析法(又称酵素免疫分析法，Enzyme-linkedimmunoassay，简称ELISA)是利用抗原抗体之间专一性键结之特性，对检体进行检测，主要以夹心法(sandwich)、间接法(indirect)、以及竞争法(Competitive)三种为主。

双抗体夹心法是检测抗原最常用的ELISA方法，适用于检测分子中具有至少两个抗原决定簇的多价抗原的定量检测，而不能用于小分子半抗原的检测。其基本工作原理是：利用连接于固相载体上的抗体和酶标抗体分别与样品中被检测抗原分子上两个抗原决定簇结合，形成固相抗体-抗原-酶标抗体免疫复合物。由于反应系统中固相抗体和酶标抗体的量相对于待测抗原是过量的，因此复合物的形成量与待测抗原的含量成正比(在方法可检测范围内)。测定复合物中的酶作用于加入的底物后生成的有色物质量(OD值)，即可确定待测抗原含量。若固相载体上的抗体和酶标抗体分别与样品中被检测抗原分子上两个不同的抗原决定簇结合，则属于双位点夹心法。

双抗体夹心法主要有三种，传统的双多抗夹心法(A法)所需检测抗体和固相载体包被抗体都是多抗，制备简单，在一定范围内检测灵敏度高，信号显示强，很难避免钩状效应，其主要问题在于：固相载体上的抗体和检测抗体都为针对完整抗原所有抗原结合位点多克隆抗体，抗原浓度比较低的时候，固相支持物上的抗体几乎跟抗原上所有位点结合，结合力强，空余位点少，检测抗体与抗原位点少，结合力弱，只要固相支持物上的抗体未与抗原结合饱和，抗原量与最后信号显示部呈线性关系；随着抗原量的增加，固相支持物上的抗体与抗原结合饱和，空余位点越来越多，检测抗体与抗原的空余位点结合，信号显示与实际抗原增长呈几何倍数增长，同样不呈线性关系；随着抗原量的增加，固相载体上的抗体与每个抗原的结合位点很少，结合力很弱，而过量的检测抗体与其结合位点增多，结合力增强，因为抗原抗体结合本来就是一个动态可逆的反应过程一旦从固相载体上抗体与抗原解离下来的时候，位点立即被检测抗体结合，形成抗原抗体复合物沉淀，在洗涤过程中被洗掉，随着抗原量的增加，而信号反而降低，就是所谓的钩状效应。此时反应后显色的吸光值(位于抗原过剩带上)与标准曲线(位于抗体过剩带上)某一抗原浓度的吸光值相同，如按常法测读，所得结果将低于实际的含量，因为标准曲线到达高峰后呈钩状弯落。钩状效应严重时，反应甚至可不显色而出现假阴性结果。因此采用传统双多抗夹心法(A法)不适用于测定标本中含量可异常增高的物质(例如血清中HBsAg、AFP和尿液HCG等)。

用高亲和力的单克隆抗体对(C法即检测抗体和固相载体包被抗体都用单克隆抗体，)生产此类试剂盒可削弱钩状效应，由于固相载体上的抗体和检测抗体结合的不是相同的位点，所以不形成竞争关系，一般情况下不会形成钩状效应，但是单克隆抗体制备周期长，成本高，特别是高亲和力的配对抗体更是不容易得到，同时，由于固相载体上抗体和检测抗体都是单位点与抗原结合，所以结合力弱，信号显示值低，敏感性差，稳定性也不好。

针对上述问题，国外很多公司以单抗作包被抗体制备固相载体，以多抗作检测抗体(B法)，由于抗原抗体结合位点竞争效应不强，不会产生钩状效用，检测信号强度介于A法和C法之间，稳定性也介于A法和C法之间，但是该法需要生产至少一个单抗，生产周期长，成本高；但相对于C法而言，由于B法只需要生产一个单抗，并且不需要配对筛选，其成本和技术难度都相对较低。

发明内容

本发明的目的是为了解决上述技术问题，提供一种制备方法简单、成本低、周期短的双抗体夹心酶联免疫分析试剂盒的生产方法。

本发明还提供一种由上述方法生产得到的检测灵敏度高、误差小、无标准曲线的钩状效应的双抗体夹心酶联免疫分析试剂盒。

一种双抗体夹心酶联免疫分析试剂盒的生产方法，包括以下步骤：

(1)抗原拆分：将含有两个以上抗原表位的完整抗原拆分成两个部分，每个部分为至少包含一个完整的有效抗原表位完全抗原；

(2)动物免疫及其检测：将上述两个完全抗原分别进行动物免疫，并采用酶联免疫吸附分析法检测动物免疫效果，分别得到两份相应的ELISA效价不低于1∶100,000的动物免疫血清；

(3)亲和层析提取：将上述两份动物免疫血清分别通过完整抗原亲和层析方法提取出两份针对各自完全抗原的抗体；