[发明专利]表达mpd基因的玫瑰红红球菌及其构建方法无效
申请号: | 201110039040.3 | 申请日: | 2011-02-16 |
公开(公告)号: | CN102174457A | 公开(公告)日: | 2011-09-07 |
发明(设计)人: | 花日茂;唐欣昀;甘旭华;高婷婷;王道胜 | 申请(专利权)人: | 安徽农业大学 |
主分类号: | C12N1/21 | 分类号: | C12N1/21;C12N15/52;C12N15/70;C12Q1/68;C12R1/01 |
代理公司: | 合肥金安专利事务所 34114 | 代理人: | 金惠贞 |
地址: | 230036 安徽*** | 国省代码: | 安徽;34 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 表达 mpd 基因 玫瑰 红红 球菌 及其 构建 方法 | ||
1.表达mpd基因的玫瑰红红球菌R-D3(Rhodococcus rhodochrous R-D3),其特征在于:其基因核苷酸序列如下:
ATGCCCCTGAAGAACCGCTTGCTGGCCCGCCTGTCCTGTGTTGCGGCCGTGGTGGCCGCCACGGCCGCCGTTGCACCGTTGACGCTGGTGTCCACCGCCCACGCCGCCGCACCGCAGGTGCGCACCTCGGCCCCCGGCTACTACCGGATGCTGCTGGGCGACTTCGAAATCACCGCGCTGTCGGACGGCACGGTGGCGCTGCCGGTCGACAAGCGGCTGAACCAGCCGGCCCCGAAGACGCAGAGCGCGCTGGCCAAGTCCTTCCAGAAAGCGCCGCTCGAAACCTCGGTCACCGGTTACCTCGTCAACACCGGCTCCAAGCTGGTGCTGGTGGACACCGGCGCGGCCGGCCTGTTCGGCCCCACCCTGGGCCGGCTGGCGGCCAACCTCAAGGCCGCAGGCTATCAGCCCGAGCAGGTCGACGAGATCTACATCACCCACATGCACCCCGACCACGTGGGCGGCTTGATGGTGGGTGAGCAACTGGCGTTCCCGAACGCGGTGGTGCGTGCGGACCAGAAAGAAGCCGATTTCTGGCTCAGCCAGACCAACCTCGACAAGGCCCCGGACGACGAGAGCAAAGGCTTCTTCAAAGGCGCCATGGCCTCGCTGAACCCCTATGTGAAGGCCGGCAAGTTCAAGCCTTTCTCGGGGAACACCGACCTGGTGCCCGGCATCAAAGCGCTGGCCAGCCACGGCCACACCCCGGGCCACACCACCTACGTGGTCGAAAGCCAGGGGCAAAAGCTCGCCCTGCTCGGCGACCTGATACTCGTCGCCGCGGTGCAGTTCGACGACCCCAGCGTCACGACCCAGCTCGACAGCGACAGCAAGTCCGTCGCGGTGGAGCGCAAGAAGGCCTTCGCGGATGCCGCCAAGGGCGGCTACCTGATCGCGGCGTCCCACCTGTCGTTCCCCGGCATCGGCCACATCCGCGCCGAAGGCAAGGGCTACCGTTTCGTGCCGGTGAACTACTCGGTCGTCAACCCCAAGTGA。
2.表达mpd基因的玫瑰红红球菌R-D3(Rhodococcus rhodochrous R-D3)的构建方法,其特征在于包括以下操作步骤:
2.1 提取微嗜酸寡养单胞菌G1(Stenotrophomonas acidaminiphila G1)菌株的基因组DNA;
2.2 以所述基因组DNA为模板PCR扩增微嗜酸寡养单胞菌G1(Stenotrophomonas acidaminiphila G1)菌株的mpd基因,扩增引物序列如下:
正向:5’-GAATTCATATGCCCCTGAAGAAC-3’
反向:5’-GAATTCTCGAGCTTGGGTTGACGACCG-3’
PCR扩增反应参数:
预变性 94℃ 5分钟,
变性 94℃ 1分钟,
复性 58℃ 1分钟,
延伸 72℃ 1分钟,
循环 30个,
终止延伸 72℃ 10分钟,
得到微嗜酸寡养单胞菌G1菌株的PCR产物,简称为G1菌株的PCR产物;
将G1菌株的PCR产物通过1%琼脂糖电泳检测,回收片段大小1kb的G1菌株的PCR产物;
2.3 将片段大小1kb的G1菌株的PCR产物与大肠杆菌质粒pET-28a(+)连接,构建测序重组质粒pET-C,操作方法如下:
2.3.1 酶切G1菌株的PCR产物
用限制性内切酶XhoⅠ、NdeⅠ酶切片段大小1kb的G1菌株的PCR产物,酶切条件如下:
限制性内切酶XhoⅠ 0.5uL
限制性内切酶NdeⅠ 0.5uL
G1菌株的PCR产物 4uL
10倍的酶切缓冲液(H Buffer) 2 uL
双蒸水(ddH2O) 13uL
37℃水浴4小时,加入1/10体积的10倍上样缓冲液(10×Loading Buffer)终止酶反应;得到G1菌株的PCR产物的酶切产物;
2.3.2 回收
将G1菌株的PCR产物的酶切产物通过 1%琼脂糖电泳检测,回收1kb的G1菌株的PCR产物的酶切片段;
2.3.3 酶切大肠杆菌质粒pET-28a(+)
用限制性内切酶XhoⅠ、NdeⅠ酶切pET-28a(+)质粒,酶切条件如下:
限制性内切酶(XhoⅠ) 0.5uL
限制性内切酶(NdeⅠ) 0.5uL
大肠杆菌质粒pET-28a(+) 4uL
10倍的酶切缓冲液(H Buffer) 2 uL
双蒸水(ddH2O) 13uL
37℃水浴4h,加入1/10体积的10倍上样缓冲液(10×Loading Buffer)终止酶反应;得到酶切的大肠杆菌质粒pET-28a(+);
2.3.4 连接
用连接试剂盒试剂将所述1kb的的G1菌株的PCR产物的酶切片段和酶切的大肠杆菌质粒pET-28a(+)连接起来;连接条件如下:
酶切的大肠杆菌质粒pET-28a(+) 1μL
G1菌株的PCR产物的酶切片段 1μL
双蒸水(ddH2O) 3μL
溶液I(Solusion I) 5μL
冰浴加样,混匀后16℃、30分钟,即为测序重组质粒pET-C连接反应液;
2.3.5大肠杆菌感受态细胞的制备和转化
2.3.5.1 将大肠杆菌DH10B接种于50ml的LB培养基中,温度37℃,摇床培养16小时,得到培养物;
2.3.5.2 取3mL培养物转接于300mL LB培养基中,在温度37℃的摇床上剧烈振荡培养2.5-3小时,使其光密度=0.4-0.5(OD600=0.4-0.5);
2.3.5.3 将浓度0.5mmol/L的氯化钙(CaCl2)溶液置于冰上预冷,分装6支50ml离心管,冰浴5分钟,4℃、1600g离心7分钟;
2.3.5.4 弃去上清,加入7mL预冷浓度0.5mmol/L的氯化钙(CaCl2)溶液,轻轻悬浮细胞,在冰放置10分钟;4℃下1100g冷冻离心5分钟;
2.3.5.5 弃去上清,加入7mL预冷浓度0.5mmol/L的氯化钙(CaCl2)溶液,轻轻悬浮细胞,在冰放置30分钟;4℃下1100g冷冻离心5分钟;
2.3.5.6 倾去上清液,加入1.4ml浓度0.5mmol/L的氯化钙(CaCl2)溶液,其中甘油浓度为10%,悬浮离心后沉淀的细胞,分别取悬浮的细胞100μl分装到1.5ml离心管中,将离心管-70℃保存,即为大肠杆菌DH10B感受态细胞;
2.3.5.7 将10μl所述测序重组质粒pET-C连接反应液加入到100μl大肠杆菌DH10B感受态细胞中;
2.3.5.8 轻轻摇匀,冰上放置10分钟,充分混匀;
2.3.5.9 温度42℃水浴中热击2分钟;
2.3.5.10 加入890μl LB液体培养基,混匀,37℃振荡培养1小时,使细胞恢复正常生长状态;得到大肠杆菌DH10B菌液;
2.3.5.11 分别取大肠杆菌DH10B菌液100μl涂布于含卡那霉素50mg/L的LB培养基平板,温度37℃、培养16~19小时,观察转化结果;
2.3.5.12 平板上长出的菌落即为转化子,提取转化子中的测序重组质粒pET-C,用限制性内切酶XhoⅠ、NdeⅠ酶切测序重组质粒pET-C,条件同上述2.3.3 酶切大肠杆菌质粒pET-28a(+)步骤,电泳图谱显示分别为1kb和5.3kb的条带,证明测序重组质粒pET-C构建正确;
2.4 测定测序重组质粒pET-C中mpd基因核苷酸序列,获得测序重组质粒pET-C中mpd基因核苷酸序列如下:
ATGCCCCTGAAGAACCGCTTGCTGGCCCGCCTGTCCTGTGTTGCGGCCGTGGTGGCCGCCACGGCCGCCGTTGCACCGTTGACGCTGGTGTCCACCGCCCACGCCGCCGCACCGCAGGTGCGCACCTCGGCCCCCGGCTACTACCGGATGCTGCTGGGCGACTTCGAAATCACCGCGCTGTCGGACGGCACGGTGGCGCTGCCGGTCGACAAGCGGCTGAACCAGCCGGCCCCGAAGACGCAGAGCGCGCTGGCCAAGTCCTTCCAGAAAGCGCCGCTCGAAACCTCGGTCACCGGTTACCTCGTCAACACCGGCTCCAAGCTGGTGCTGGTGGACACCGGCGCGGCCGGCCTGTTCGGCCCCACCCTGGGCCGGCTGGCGGCCAACCTCAAGGCCGCAGGCTATCAGCCCGAGCAGGTCGACGAGATCTACATCACCCACATGCACCCCGACCACGTGGGCGGCTTGATGGTGGGTGAGCAACTGGCGTTCCCGAACGCGGTGGTGCGTGCGGACCAGAAAGAAGCCGATTTCTGGCTCAGCCAGACCAACCTCGACAAGGCCCCGGACGACGAGAGCAAAGGCTTCTTCAAAGGCGCCATGGCCTCGCTGAACCCCTATGTGAAGGCCGGCAAGTTCAAGCCTTTCTCGGGGAACACCGACCTGGTGCCCGGCATCAAAGCGCTGGCCAGCCACGGCCACACCCCGGGCCACACCACCTACGTGGTCGAAAGCCAGGGGCAAAAGCTCGCCCTGCTCGGCGACCTGATACTCGTCGCCGCGGTGCAGTTCGACGACCCCAGCGTCACGACCCAGCTCGACAGCGACAGCAAGTCCGTCGCGGTGGAGCGCAAGAAGGCCTTCGCGGATGCCGCCAAGGGCGGCTACCTGATCGCGGCGTCCCACCTGTCGTTCCCCGGCATCGGCCACATCCGCGCCGAAGGCAAGGGCTACCGTTTCGTGCCGGTGAACTACTCGGTCGTCAACCCCAAGTGA
2.5 构建表达重组质粒pDA71-C
2.5.1 用PCR扩增的方法从测序重组质粒pET-C中克隆mpd基因,扩增测序重组质粒pET-C上mpd基因的PCR扩增引物如下:
正向:5’- CG TCTAGAATGCCCCTGAAGAACCGCT-3’
反向:5’- CGGGTACCTCACTTGGGGTTGACGACC-3’
PCR反应参数:
预变性 94℃ 5分钟,
变性 94℃ 1分钟,
复性 56℃ 1分钟,
延伸 72℃ 1分钟,
循环 30个,
终止延伸 72℃ 10分钟,
得到测序重组质粒pET-C的PCR产物;
2.5.2 构建表达重组质粒pDA71-C
2.5.2.1 回收测序重组质粒pET-C的PCR产物
用1%琼脂糖电泳检测扩增的测序重组质粒pET-C的PCR产物,回收1kb的测序重组质粒pET-C的PCR产物片段;
2.5.2.2 酶切测序重组质粒pET-C的PCR产物
用两种限制性内切酶KpnⅠ、XbaⅠ分别酶切所述的测序重组质粒pET-C的PCR产物片段,酶切条件如下:
测序重组质粒pET-C的PCR产物片段 5μL
10倍的酶切缓冲液(10×L Buffer) 2μL
限制性内切酶KpnI 0.5μL
无菌水补至20μL
37℃水浴4小时,加入1/10体积的10倍上样缓冲液,1%琼脂糖凝胶电泳,回收1kb的测序重组质粒pET-C的PCR产物的第一次酶切产物;
第二次酶切条件如下:
回收的1kb测序重组质粒pET-C的PCR产物的第一次酶切产物 10uL
10倍的酶切缓冲液(M Buffer) 2μL
限制性内切酶XbaⅠ 0.5μL
无菌水补至20μL
37℃水浴4小时,加入1/10体积的10倍的上样缓冲液(10× Loading Buffer),
1%琼脂糖凝胶电泳,回收1kb的测序重组质粒pET-C的PCR产物的第二次酶切产物;
2.5.2.3 酶切质粒pDA71(美国标准菌种典藏中心American Type Culture Collection,缩写ATCC,检索号77474)
用两种酶KpnⅠ、XbaⅠ分别酶切质粒pDA71,酶切条件如下:
质粒pDA71 5μL
10倍的酶切缓冲液(10×L buffer ) 2μL
限制性内切酶KpnI 0.5μL
无菌水补至20μL
37℃水浴4小时,加入1/10体积的10倍的上样缓冲液(10× Loading Buffer),
1%琼脂糖凝胶电泳,回收质粒pDA71的第一次酶切产物;
第二次酶切条件如下:
回收的质粒pDA71的一次酶切产物 10μL
10倍的酶切缓冲液(10×M buffer) 2μL
限制性内切酶XbaⅠ 0.5μL
无菌水补至20μL
37℃水浴4小时,加入1/10体积的10倍的上样缓冲液(10× Loading Buffer),
1%琼脂糖凝胶电泳,回收质粒pDA71的第二次酶切产物;
2.5.2.4 连接
用连接试剂盒将所述质粒pDA71的第二次酶切产物和测序重组质粒pET-C的PCR产物的第二次酶切产物连接,构建表达重组质粒pDA71-C;连接条件如下:
质粒pDA71的第二次酶切产物 4uL
测序重组质粒pET-C的PCR产物的第二次酶切产物 4uL
10倍连接缓冲液(10×Ligase Buffer) 1uL
T4 DNA 连接酶(Ligase) 1uL,
16℃水浴12-16小时,即得表达重组质粒pDA71-C连接产物,表达重组质粒pDA71-C连接产物中含有降解农药毒死蜱的mpd基因;
2.5.2.5 用表达重组质粒pDA71-C连接产物转化大肠杆菌DH10B感受态细胞
大肠杆菌DH10B感受态细胞的制备方法如上述2.3.5.1~2.3.5.6步骤;
用表达重组质粒pDA71-C连接产物转化大肠杆菌DH10B感受态细胞,将10μl表达重组质粒pDA71-C连接产物加入到100μl大肠杆菌DH10B感受态细胞中;操作方法如上述第2.3.5.8~2.3.5.12步骤,但在第2.3.5.11步骤中需用氨苄青霉素50mg/L取代卡那霉素,获得带有表达重组质粒pDA71-C的转化子;
采用公知的方法从带有表达重组质粒pDA71-C的转化子中提取表达重组质粒pDA71-C,具体提取方法如下:
将一环表达重组质粒pDA71-C的转化子接种到3mL含有氨苄青霉素(50mg/L)的LB液体培养基,37℃振荡培养过夜;取1.5mL菌液加入离心管中,4℃下10000r/min离心1min;弃上清,将管倒置吸水纸上,使液体流尽;
加入150μl用冰预冷的溶液Ⅰ(50mmol/L葡萄糖,25mmol/L三羟甲基氨基甲烷(Tris·Cl)pH 8.0,10 mM/L乙二胺四乙酸(EDTA),pH 8.0),剧烈振荡,重新悬浮菌体沉淀,室温放置3~5min;加入200μl新配制的溶液Ⅱ(0.2mol/L氯化钠(NaOH),1%十二烷基硫酸钠(SDS)),温和混匀,切勿剧烈振荡,室温5min;加入450μl预冷的溶液Ⅲ(乙酸钾溶液,pH 4.8),反复颠倒数次,温和混匀,室温5~10min;12000r/min离心5min;
将上清液转入干净的1.5mL 离心管中,加入1.5倍体积预冷无水乙醇,冰上放置10分钟,然后12000r/min离心10min;彻底弃去上清液,沿壁加入1mlL 70%乙醇漂洗沉淀,颠倒数次,立即去上清,自然干燥;将沉淀物溶于30μl TE缓冲液(10mM/L 三羟甲基氨基甲烷(Tris·Cl),1mM/L乙二胺四乙酸(EDTA),pH 8.0,含20μg/mL的核酸酶RNaseA))中,37℃保温30min后即为表达重组质粒pDA71-C;
采用与上述第2.5.2.3节中XbaⅠ酶切、KpnⅠ酶切同样的条件酶切表达重组质粒pDA71-C,1%琼脂糖电泳显示两个条带,大小分别为1kb和6.2kb,分别为微嗜酸寡养单胞菌G1菌株的mpd基因和微嗜酸寡养单胞菌G1菌株的pDA71质粒载体,证明表达重组质粒pDA71-C构建正确;
2.5.2.6 玫瑰红红球菌R-D3(Rhodococcus rhodochrous R-D3)的转化
2.5.2.6.1 玫瑰红红球菌R-D3菌株电转化感受态细胞的制备
2.5.2.6.1.1 按1%的接种量将玫瑰红红球菌R-D3菌株接种到100mL 的LB培养基中,温度30℃,培养18-24小时,得到玫瑰红红球菌R-D3菌株的扩大培养物,简称R-D3菌株的扩大培养物;
2.5.2.6.1.2 取10mL R-D3菌株的扩大培养物,4000转/分钟离心10分钟,弃去上清液,收集细胞,用4℃的无菌水洗涤1次,再用4℃10%甘油洗涤2次;
2.5.2.6.1.3 离心2次后,弃去上清液,用1mL浓度10%的甘油重悬,得到玫瑰红红球菌R-D3菌株感受态细胞;
2.5.2.6.2 用表达重组质粒pDA71-C电转化玫瑰红红球菌R-D3菌株感受态细胞,步骤如下:
2.5.2.6.2.1 取1μL表达重组质粒pDA71-C与80μL的玫瑰红红球菌R-D3菌株感受态细胞混合,移入电击杯中,冰浴10分钟;将电击杯置于电击槽中电击,电击参数:电击杯0.2cm,电压2.0kV,电击时间3.5ms;
2.5.2.6.2.2 电击完毕,立即向杯中加入420μL的LB培养液,温度30℃、振荡培养3小时,即为电击转化产物;
2.5.2.6.2.3 将电击转化产物涂布含50μg/mL氨苄青霉素和200mg/L农药毒死蜱乳油制剂的牛肉膏蛋白胨平板,30℃培养5天;
2.5.2.6.3 玫瑰红红球菌R-D3中mpd基因表达的检测
平板上出现菌落,有的菌落周围出现透明的水解圈,有的菌落周围没有透明的水解圈;有透明水解圈者,是由于这些菌落中的细胞的mpd基因表达,降解农药毒死蜱,因而形成透明的水解圈;证明微嗜酸寡养单胞菌G1菌株的mpd基因在这些菌落的细胞中表达,降解农药毒死蜱,出现水解圈;这些菌落即为表达mpd基因的玫瑰红红球菌R-D3(Rhodococcus rhodochrous R-D3),基因核苷酸序列如下:
ATGCCCCTGAAGAACCGCTTGCTGGCCCGCCTGTCCTGTGTTGCGGCCGTGGTGGCCGCCACGGCCGCCGTTGCACCGTTGACGCTGGTGTCCACCGCCCACGCCGCCGCACCGCAGGTGCGCACCTCGGCCCCCGGCTACTACCGGATGCTGCTGGGCGACTTCGAAATCACCGCGCTGTCGGACGGCACGGTGGCGCTGCCGGTCGACAAGCGGCTGAACCAGCCGGCCCCGAAGACGCAGAGCGCGCTGGCCAAGTCCTTCCAGAAAGCGCCGCTCGAAACCTCGGTCACCGGTTACCTCGTCAACACCGGCTCCAAGCTGGTGCTGGTGGACACCGGCGCGGCCGGCCTGTTCGGCCCCACCCTGGGCCGGCTGGCGGCCAACCTCAAGGCCGCAGGCTATCAGCCCGAGCAGGTCGACGAGATCTACATCACCCACATGCACCCCGACCACGTGGGCGGCTTGATGGTGGGTGAGCAACTGGCGTTCCCGAACGCGGTGGTGCGTGCGGACCAGAAAGAAGCCGATTTCTGGCTCAGCCAGACCAACCTCGACAAGGCCCCGGACGACGAGAGCAAAGGCTTCTTCAAAGGCGCCATGGCCTCGCTGAACCCCTATGTGAAGGCCGGCAAGTTCAAGCCTTTCTCGGGGAACACCGACCTGGTGCCCGGCATCAAAGCGCTGGCCAGCCACGGCCACACCCCGGGCCACACCACCTACGTGGTCGAAAGCCAGGGGCAAAAGCTCGCCCTGCTCGGCGACCTGATACTCGTCGCCGCGGTGCAGTTCGACGACCCCAGCGTCACGACCCAGCTCGACAGCGACAGCAAGTCCGTCGCGGTGGAGCGCAAGAAGGCCTTCGCGGATGCCGCCAAGGGCGGCTACCTGATCGCGGCGTCCCACCTGTCGTTCCCCGGCATCGGCCACATCCGCGCCGAAGGCAAGGGCTACCGTTTCGTGCCGGTGAACTACTCGGTCGTCAACCCCAAGTGA。
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