[发明专利]一种微生物转化制备(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-(2R)-丁醇的方法在审
申请号: | 201110081009.6 | 申请日: | 2011-04-01 |
公开(公告)号: | CN102732579A | 公开(公告)日: | 2012-10-17 |
发明(设计)人: | 沈文和;欧志敏;车大庆 | 申请(专利权)人: | 浙江九洲药业股份有限公司 |
主分类号: | C12P13/02 | 分类号: | C12P13/02;C12N1/18;C12R1/865 |
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地址: | 318000 浙*** | 国省代码: | 浙江;33 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 一种 微生物 转化 制备 叔丁氧 羰基 氨基 苯基 丁醇 方法 | ||
1.一种微生物转化制备(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-(2R)-丁醇的方法,其特征在于,所述方法是以(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-2-丁酮为底物,以酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No. 2266发酵获得的含酶菌体细胞为生物催化剂,进行转化反应制得所述(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-(2R)-丁醇。
2.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述的方法为:以pH 5.0~8.0的磷酸盐缓冲液为反应溶剂,以(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-2-丁酮为底物、以酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)CGMCC No. 2266发酵获得的含酶菌体细胞为生物催化剂,于25~45 ℃下转化反应12~72小时,反应结束后,转化液经分离纯化得到所述(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-(2R)-丁醇。
3.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述底物在反应体系中的初始终浓度为0.1~1 mmol/L。
4.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述的反应体系中还可以添加有终浓度为5~20%的乙醇。
5.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述的含酶菌体细胞用量以细胞干重计为1~20 g/g底物。
6.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述的含酶菌体细胞按照以下方法制备:将酿酒酵母CGMCC No. 2266接种至发酵培养基中,摇床转速为150~200 r/min,26~35 ℃下培养18~30 h,将发酵液离心,制得含酶菌体细胞。
7.如权利要求2所述的制备方法,其特征在于,所述的(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-(2R)-丁醇分离纯化方法如下:反应结束后,将转化液4000 r/min离心20分钟,弃去菌体沉淀,将上清液用等体积乙酸乙酯连续萃取3次,合并乙酸乙酯萃取液,在乙酸乙酯萃取液中加入无水硫酸钠除去水分,抽滤,取滤液蒸馏除去乙酸乙酯,即得所述(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-(2R)-丁醇。
8.如权利要求1所述的制备方法,其特征在于,所述的方法按照以下步骤进行:
(1)斜面培养:将酿酒酵母CGMCC No. 2266接种到斜面培养基,26~35 ℃培养4~6天得菌体斜面;
(2)种子培养:从菌体斜面取一接种环菌体转接到种子培养基,摇床转速为150~200 r/min,26~35℃培养18~26 h得种子液;
(3)发酵培养:取种子液,以体积分数10~20%的接种量接种于发酵培养基中,摇床转速为150~200 r/min,26~35℃培养18~30 h,将发酵液离心分离得到所述含酶菌体细胞;
(4)生物转化:在pH 5.0~8.0的磷酸盐缓冲液中,添加终浓度为5~20%的乙醇作为辅助底物,加入终浓度为0.1~1 mmol/L的(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-2-丁酮为底物,以及相当于细胞干重质量为(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-2-丁酮1~20倍的含酶菌体细胞,25~45 ℃下转化反应12~72小时,反应结束制得转化液;
(5)分离纯化:转化反应结束后,将转化液于4000 r/min离心20分钟,弃去菌体沉淀,将上清液用等体积乙酸乙酯连续萃取3次,合并乙酸乙酯萃取液,在乙酸乙酯萃取液中加入无水硫酸钠除去水分,抽滤,滤液蒸馏除去乙酸乙酯,即得所述(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-(2R)-丁醇。
9.如权利要求2所述的方法,其特征在于所述方法按如下步骤进行:
(1)斜面培养:将酿酒酵母CGMCC No. 2266接种到斜面培养基,26~35℃培养4~6天得菌体斜面;所述的斜面培养基终浓度组成为:麦芽汁5~15 g/L,酵母粉2~4 g/L,蛋白胨4~6 g/L,葡萄糖7~12 g/L,琼脂15~25 g/L,自然pH值,溶剂为水;
(2)种子培养:从菌体斜面取一接种环菌体转接到种子培养基,26~35 ℃,摇床转速为150~200 r/min,培养18~26 h得种子液;所述的种子培养基终浓度组成为:葡萄糖26~32 g/L,酵母粉2~4 g/L,硫酸铵3~6 g/L,无水MgSO4 0.2~0.4 g/L,K2HPO4·3H2O 0.5~1.5 g/L,KH2PO4 0.6~1.5 g/L,用NaOH或HCl溶液调整液体培养基的pH值为7.0,溶剂为水;
(3)发酵培养:取种子液,以体积分数为10~20%的接种量接种于发酵培养基中,培养温度为26~35 ℃,摇床转速为150~200 r/min,培养18~30 h得到含有含酶菌体细胞的发酵液,离心分离得到所述含酶菌体细胞;所述发酵培养基终浓度组成为:葡萄糖26~32 g/L,酵母粉2~4 g/L,硫酸铵3~6 g/L,无水MgSO4 0.2~0.4 g/L,K2HPO4·3H2O 0.5~1.5 g/L,KH2PO4 0.6~1.5 g/L,用NaOH或HCl溶液调整液体培养基的pH值为7.0,溶剂为水;
(4)生物转化:在pH 5.0~8.0的磷酸盐缓冲液中,加入终浓度为0.1~1 mmol/L的(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-2-丁酮,添加终浓度为5~20%的乙醇作为辅助底物,以及以相当于细胞干重质量为(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-2-丁酮1~20倍的含酶菌体细胞,于25~45 ℃下转化反应12~72小时得转化液;
(5)分离纯化:反应结束后,将转化液于4000 r/min离心20分钟,弃去菌体沉淀,将上清液用等体积乙酸乙酯连续萃取3次,合并乙酸乙酯萃取液,在乙酸乙酯萃取液中加入无水硫酸钠除去水分,抽滤,取滤液蒸馏除去乙酸乙酯,即得所述(3S)-3-(叔丁氧羰基)氨基-1-氯-4-苯基-(2R)-丁醇。
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