[发明专利]一种牛α-干扰素基因及其制备方法和应用在审
申请号: | 201510750781.0 | 申请日: | 2015-11-06 |
公开(公告)号: | CN105349549A | 公开(公告)日: | 2016-02-24 |
发明(设计)人: | 张克春 | 申请(专利权)人: | 上海市奶牛研究所 |
主分类号: | C12N15/21 | 分类号: | C12N15/21;C12N15/70;C12N1/21;C12P21/02;C07K14/56;C12R1/19 |
代理公司: | 上海泰能知识产权代理事务所 31233 | 代理人: | 黄志达 |
地址: | 200436 *** | 国省代码: | 上海;31 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 种牛 干扰素 基因 及其 制备 方法 应用 | ||
技术领域
本发明属于干扰素领域,特别涉及一种牛α-干扰素基因及其制备方法和应用。
背景技术
干扰素是一种具有广谱抗病毒、抗肿瘤和免疫调节等功能的细胞因子,能通过多种机制抑制病毒生长,促进免疫细胞活性。α-干扰素(IFN-α)属于I型干扰素,是由白细胞分泌的一类具有抗病毒和免疫调节功能的细胞因子。IFN-α与靶细胞的表面受体结合后可以激活靶细胞内潜在抗病毒基因的表达,产生具有酶活性的抗病毒蛋白(Anti-virualProtein,AVP),使细胞具备抗病毒的能力,降低病毒在细胞内的增殖速度,同时减少细胞感染的损伤。随着奶牛集约化养殖程度不断提高,奶牛病毒性疾病的感染率也在逐年上升。研究表明,牛α干扰素(BoIFN-α)可以抑制多种牛类病毒的增殖,包括牛传染性鼻气管炎病毒(IBRV)、口蹄疫病毒(FMDV)、牛传染性腹泻病毒(BVDV)、牛呼吸道合胞体病毒(BRSV)等。然而由于生产工艺和成本等问题,牛干扰素的研制还停留在实验室阶段,并未在临床上大量使用。大肠杆菌表达系统具有操作简单和成本低廉两个显著特征,是应用最广泛的表达系统之一,而国内目前利用大肠杆菌表达系统获得的BoIFN-α绝大多数完全以包涵体的形式存在,需要经过繁琐的变性复性过程,才能获得少量有活性的重组蛋白。
发明内容
本发明所要解决的技术问题是提供一种牛α-干扰素基因及其制备方法和应用,在IPTG浓度为0.64mmol/L,诱导温度为15℃,诱导时间为9h的条件下,可溶性目的蛋白的表达量最高,为36mg/L菌液,为牛α-干扰素的规模化生产和应用奠定了基础。
本发明的一种牛α-干扰素基因,其序列如SEQIDNO:1所示。
本发明的一种牛α-干扰素基因的重组质粒,所述重组质粒为rBoIFN-α-pColdII。
本发明的一种牛α-干扰素基因的重组菌株,所述重组菌株为rBoIFN-α-pColdII/BL21。
本发明的一种牛α-干扰素基因的制备方法,包括:
在BoIFN-α成熟蛋白编码基因3’端添加终止密码子TGA,分别在两端设计NdeI/HindIII酶切位点,即得。
本发明的一种牛α-干扰素基因的应用,具体步骤如下:
(1)将基因通过NdeI/HindIII双酶切克隆至表达载体pColdII,转化大肠杆菌BL21(DE3)后挑取单菌落进行培养,提取质粒,用NdeI/HindIII双酶切鉴定;
(2)挑取单个阳性重组菌落,置于含有氨苄的LB培养液中振荡培养过夜;将培养菌液按1:250比例接种于上述LB培养液中,37℃振荡培养至OD600=0.4~0.6,加入IPTG至终浓度为0.01~0.64mmol/L,5~35℃诱导1~21h后,收集菌体沉淀,加入裂解缓冲液,充分悬浮混匀;置冰浴中超声裂解,裂解产物离心,收集上清,沉淀用裂解缓冲液充分悬浮,即得可溶性目的蛋白。
所述氨苄的浓度为0.1mg/mL。
所述超声裂解的具体条件为:超声功率400w,工作5s、间隔5s,共计10min。
有益效果
本发明采用冷表达体系在大肠杆菌系统中表达出有活性的牛α-干扰素蛋白,具有以下有益效果:
(1)本发明人工设计合成的牛α-干扰素基因选用大肠杆菌偏爱密码子,有利于密码子在大肠杆菌中的识别和表达,从而可达到高效表达的目的;
(2)本发明的表达系统有利于重组蛋白的正确折叠,促进了牛α-干扰素以可溶性形式表达,该蛋白在非变性条件下经一步纯化即可获得高纯度产品,工序少,生产效率高;
(3)本发明获得的可溶性表达的牛α-干扰素表达量高,能达到36mg/L,为后续规模化生产打下了良好的基础;
(4)上述牛α-干扰素蛋白实现良好的抗病毒活性,在MDBK细胞上的抗水泡性口炎病毒(VSV)的活性可达1.0×106U/mg,具有良好的产业应用前景。
附图说明
图1为重组表达载体BoIFN-α-pColdII的双酶切鉴定;其中,M为DNA标准;1为NdeI和HindIII双酶切质粒BoIFN-α-pColdII;2为未酶切对照质粒BoIFN-α-pColdII;
图2为rBoIFN-α表达后的纯化;其中,M为:蛋白质标准;1为过柱前上清;2为过柱后上清;3为洗脱液。
具体实施方式
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