[发明专利]一种自体软骨细胞的原代分离方法

说明书

技术领域

本发明涉及细胞领域，具体涉及一种软骨细胞的分离方法，尤其是一种自体软骨细胞的原代分离方法。

背景技术

软骨由软骨组织及其周围的软骨膜构成，软骨组织是由胶原组织、少许细胞、以及60-80％的水份等成份所构成。根据软骨组织内所含纤维成分的不同，可将软骨分为透明软骨、弹性软骨和纤维软骨三种，其中以透明软骨的分布较广，结构也较典型。每根骨的末端，都有一层软骨组织包裹着。这些软骨组织可使骨骼之间避免摩擦及冲击。成人的软骨组织中并没有血管或神经，因此软骨组织受伤后自行修补的能力有限。

软骨组织工程学是工程学与生物医学尤其是细胞生物学相结合的边缘科学，它涉及细胞、支架材料和包括多种生长因子在内的发育环境3种基本要素。1988年Vacanti等将聚羟基乙酸(PGA)和聚乳酸(PLA)作为支架，复合软骨细胞后植入裸鼠皮下进行体内培养，28天后发现有软骨样组织出现。1997年Cao等以一个3岁儿童耳廓作模型，用涂有PLA的PGA无纺网制成人耳形状的支架，接种软骨细胞，体外培养1周后植入裸鼠皮下，12周后取出的标本呈人耳状软骨，组织形态学检查证实为软骨组织。这一实验的成功，标志着预制人工软骨的组织工程技术正在走向成熟。尽管目前软骨组织工程的研究仍处在体外和动物体内实验阶段，距离有效的临床应用尚有艰巨的道路要走，但其发展速度和临床应用前景已受到广泛关注。

软骨组织工程是将软骨种子细胞种植于可生物降解、组织相容性好的生物材料形成复合物，然后再把该复合物植入软骨缺损处，生物材料自行降解的过程中，种植的细胞形成新的软骨来填充缺损。

在软骨组织工程研究中对软骨种子细胞的数量要求巨大、生物学功能活性要求高，软骨种子细胞的来源仍是未很好解决的问题。虽然体外传代培养可以扩增细胞数量，但软骨细胞增殖能力有限，扩增达一定量后细胞出现复制衰老和产生去分化及生物学功能衰退。因此，以有限的供体活组织收获尽可能多而功能活性高的原代软骨细胞，以降低体外扩增倍数，无论是在软骨组织工程的研究中还是在临床应用中，都显得非常重要。而目前常用的原代软骨细胞分离方法收获效率低，造成了供体活组织的浪费。且软骨细胞得率低，活力较差，继续扩增培养就仍然很难满足自体软骨细胞或组织移植的要求。

发明内容

有鉴于此，本发明的目的在于针对现有技术的缺陷，提供一种自体软骨细胞的原代分离方法。

为实现本发明的目的，本发明采用如下技术方案：

一种自体软骨细胞的原代分离方法，自体软骨组织预处理后，剪碎，先用胰蛋白酶-EDTA处理，然后用Ⅱ型胶原酶溶液消化，待大部分细胞游离时，细胞筛网过滤，离心弃上清，收集细胞用DMEM高糖完全培养基重悬后培养3天，收集贴壁细胞即得原代软骨细胞。

其中，所述预处理为用含有双抗的PBS溶液进行清洗，以清除自体软骨组织表面的血污及附着的其他组织。所述预处理优选在无菌条件下进行。

按照本发明，所述含有双抗的PBS溶液中所述双抗为青霉素和链霉素的混合物。其中所述青霉素终浓度为100U/ml，链霉素的终浓度为100U/ml。

预处理后的自体软骨组织需要先剪碎。优选剪碎为剪成1mm³的大小。

本发明所述自体软骨细胞的原代分离方法，先用胰蛋白酶-EDTA溶液处理。本领域技术人员可以理解，所述胰蛋白酶-EDTA溶液为含有胰蛋白酶和EDTA的PBS溶液。

优选的，按g/ml计，所述胰蛋白酶的终浓度为0.25％，所述EDTA的终浓度为0.02％。

本发明所述自体软骨细胞的原代分离方法中所述胰蛋白酶-EDTA溶液处理时间优选为5～10min。

在胰蛋白酶-EDTA溶液处理后还包括用PBS溶液清洗软骨组织的步骤。优选PBS溶液清洗软骨组织3-5次。

进一步，本发明所述原代分离方法在胰蛋白酶-EDTA溶液处理后采用Ⅱ型胶原酶溶液消化。

优选的，所述Ⅱ型胶原酶的终浓度为0.1v/v％～0.2v/v％。

本领域技术人员可以理解，所述Ⅱ型胶原酶消化优选为4℃消化过夜。在一些实施例中，消化时间为12小时左右。

优选的，所述细胞筛网为200目不锈钢细胞筛网。

优选的，所述离心为1500rpm离心2次，每次5min。

本发明所述自体软骨细胞的原代分离方法在离心后收集细胞用DMEM高糖完全培养基培养。

其中，重悬后细胞密度为2×10⁵个/ml。