1.酶组合物在制备稀有人参皂苷C-K的方法,其特征在于步骤为:取人参皂苷Rb2、Rc和Rb3的浓度均为2mM,转化条件为85℃,pH 5.0 50mmol/L柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液,通过HPLC-ELSD进行检测;添加β-葡萄糖苷酶Dth3至于0.64 U/mL后在60 min内将人参皂苷Rb2、Rc和Rb3转化为稀有人参皂苷C-Y、C-Mc和C-Mx;取人参皂苷C-Y、C-Mc和C-Mx的浓度均为2mM,转化条件为85℃,pH 5.0 50mmol/L柠檬酸-磷酸氢二钠缓冲液,通过HPLC-ELSD进行检测,添加β-半乳糖苷酶Tpegal至10U/mL 、添加α-阿拉伯呋喃糖苷酶TthFase至1.2 U/mL和添加β-木糖苷酶Tpexyl至1U/mL后,在60 min内将相应人参皂苷底物转化为稀有人参皂苷C-K;
所述酶组合物由β-葡萄糖苷酶、β-半乳糖苷酶、阿拉伯呋喃糖苷酶和β-木糖苷酶组成,所述β-葡萄糖苷酶为来源于Dictyoglomus thermophilum DSM 3960 β-葡萄糖苷酶Dth3;具体制备方法为:Dictyoglomus thermophilum购于DSMZ菌种保藏中心编号为DSM3960;
其培养基配方为:10 g/L可溶性淀粉,3 g/L酵母粉,5 g/L 胰蛋白胨,5 g/L 肉浸液,10 g/L 2-吗啉乙磺酸,10 mg/L 七水合硫酸铁,1 mg/L 刃天青,调pH为7.2,煮沸冲氮气,除去氧气后,培养基在无氧条件下装入厌氧瓶灭菌;用注射器按照0.5%接种量接种,85℃静止培养24 h,收集细胞;静置培养Dictyoglomus thermophilum 24 h,取30 mL菌液4,000 g离心10 min收集细胞;用9.5 mL TE缓冲液重悬菌体,加入0.5 mL 10%十二烷基硫酸钠和50 μL20 mg/mL蛋白酶K,混合均匀,37℃保温1 h;加入1.8 mL 5 mol/L NaCl,1.5 mL 十六烷基三乙基溴化铵/NaCl,混匀,65℃温育20 min;加入等体积氯仿/异戊醇,混匀,6,000 g离心10 min;为防止剪切力造成基因组DNA断裂,用粗口吸管将上清转入另一离心管中,加入等体积酚/氯仿/异戊醇混匀,6000 g离心10 min;另一离心管中,加入0.6倍体积异丙醇,轻轻晃动至白色丝状DNA沉淀清晰可见;用吸管将DNA缠绕其上,在70%酒精中清洗;用无菌牙签将DNA从吸管上刮下,转入1.5 mL离心管中;室温下风干,加500 μL TE 缓冲液溶解;取50 μL用核酸蛋白检测仪检测DNA浓度;按照已知的Dictyoglomus thermophilum极耐热β-葡萄糖苷酶基因Dth_1949设计引物,并去除终止密码子;以提取的Dictyoglomus thermophilum的基因组DNA为模板,用合成的引物P1: CTAGCTAGCGCACTTAAATACAGGTTTCCTGA; P2: ATTTGCGGCCGCTTATTTAAGAAACTCTTTCTCCATCTC进行PCR扩增,扩增的条件是95℃,3min;30次循环,每次循环流程为 94℃,10 s;58℃,30 s;72℃,2 min50s;72℃,10 min;反应停止,4℃保温;通过凝胶回收试剂盒对 PCR 扩增产物进行纯化;得到Dictyoglomus thermophilum极耐热β-葡萄糖苷酶基因;获得的Dictyoglomus thermophilum极耐热β-葡萄糖苷酶基因和pET-28a分别用Nco I和Not I进行双酶切,并分别割胶回收,浓缩后16℃连接过夜,将连接产物转化大肠杆菌Top10F’感受态细胞,转化产物涂布到添加卡那霉素至终浓度50 mg/L 的LB固体培养基上37℃过夜培养,接种几个单菌落到添加卡那霉素至终浓度50 mg/L的 LB液体培养基中培养8-10小时后,收集菌体提取质粒,酶切验证去除空载质粒,将重组质粒进行核酸序列测定,得到正确的重组表达载体pET20b-bgl;重组极耐热β-葡萄糖苷酶Dth3的表达及纯化:将重组质粒pET-20b-bgl转化大肠杆菌BL21DE3宿主菌,在含有50 μg/mL Kana的LB平板上经过37℃培养过夜,所述LB平板为胰蛋白胨 10 g/L,酵母提取物 5 g/L,NaCl 5 g/L,琼脂 15 g/L;挑转化子到200 mL的100 μg/mL Amp的 LB培养基中,37℃,200 rpm振荡培养至OD600为0.6时,加入终浓度为0.5 mM 异丙基β-D-硫代吡喃半乳糖苷诱导剂,30℃诱导培养8 h,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13000 rpm离心15min,收集菌体,去上清加入无菌水,超声波破碎细胞,随后70℃热处理30 min,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13000 rpm离心15 min,上清即为重组极耐热β-葡萄糖苷酶的纯酶;
所述β-半乳糖苷酶为来源于Thermotoga petrophila DSM13995 β-半乳糖苷酶Tpegal,且Tpegal具有α-阿拉伯吡喃糖苷酶活性;具体制备方法为:Thermotoga petrophila购于DSMZ菌种保藏中心编号为DSM 13995,其培养基配方为:10 g/L可溶性淀粉,3 g/L酵母粉,5 g/L 胰蛋白胨,5 g/L 肉浸液,10 g/L 2-吗啉乙磺酸,10 mg/L 七水合硫酸铁,1 mg/L 刃天青,调pH为7.2,煮沸冲氮气,除去氧气后,培养基在无氧条件下装入厌氧瓶灭菌;用注射器按照0.5%接种量接种,85℃静止培养24 h,收集细胞;静置培养Thermotoga petrophila 24 h,取30 mL菌液4,000 g离心10 min收集细胞;用9.5 mL TE缓冲液重悬菌体,加入0.5 mL 10%十二烷基硫酸钠和50 μL 20 mg/mL蛋白酶K,混合均匀,37℃保温1 h;加入1.8 mL 5 mol/L NaCl,1.5 mL 十六烷基三乙基溴化铵/NaCl,混匀,65℃温育20 min;加入等体积氯仿/异戊醇,混匀,6,000 g离心10 min;为防止剪切力造成基因组DNA断裂,用粗口吸管将上清转入另一离心管中,加入等体积酚/氯仿/异戊醇混匀,6000g离心10 min;另一离心管中,加入0.6倍体积异丙醇,轻轻晃动至白色丝状DNA沉淀清晰可见;用吸管将DNA缠绕其上,在70%酒精中清洗;用无菌牙签将DNA从吸管上刮下,转入1.5mL离心管中;室温下风干,加500 μL TE 缓冲液溶解;取50 μL用核酸蛋白检测仪检测DNA浓度;按照已知的Thermotoga petrophila极耐热β-葡萄糖苷酶基因Tpe_1557设计引物,并去除终止密码子;以提取的Thermotoga petrophila的基因组DNA为模板,用合成的引物P3:CCCATATGCTCGGAGTCTGTTACTATCCT ;P4: CGCTCGAGGTGTTCGTTTTCCCTCCATATC进行PCR扩增,扩增的条件是95℃,3 min;30次循环,每次循环流程为94℃,30 s;58℃,30 s;72℃,1min30s;72℃,10 min;反应停止,4℃保温;通过凝胶回收试剂盒对 PCR 扩增产物进行纯化,得到Thermotoga petrophila极耐热β-葡萄糖苷酶基因;得到Thermotoga petrophila极耐热β-葡萄糖苷酶基因和pET-20b分别用Nde I和Xho I进行双酶切,并分别割胶回收,浓缩后16℃连接过夜,将连接产物转化大肠杆菌Top10F’感受态细胞,转化产物涂布到氨苄青霉素至终浓度100 mg/L的LB固体培养基上37℃过夜培养,接种几个单菌落到氨苄青霉素至终浓度100 mg/L的LB液体培养基中培养8-10小时后,收集菌体提取质粒,酶切验证去除空载质粒,将重组质粒进行核酸序列测定,得到正确的重组表达载体pET20b-gal;将重组质粒pET-20b-gal转化大肠杆菌BL21DE3 宿主菌,在含有100 μg/mL Amp的LB平板上经过37℃培养过夜,所述LB平板为:胰蛋白胨 10 g/L,酵母提取物 5 g/L,NaCl 5 g/L,琼脂 15 g/L;挑转化子到200 mL 100 μg/mL Amp 的LB培养基中,37℃,200 rpm振荡培养至OD600为0.6时,加入终浓度为0.5 mM 异丙基β-D-硫代吡喃半乳糖苷诱导剂,30℃诱导培养8 h,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13000 rpm离心15 min,收集菌体,去上清加入无菌水,超声波破碎细胞,随后70℃热处理30 min,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13000 rpm离心15 min,上清即为重组极耐热β-半乳糖苷的纯酶;所述α-阿拉伯呋喃糖苷酶为来源于Thermotoga thermarum DSM 5069 α-阿拉伯呋喃糖苷酶TthFase;具体制备方法为:Thermotoga thermarum DSM 5069购于DSMZ菌种保藏中心,编号为:DSM 5069,其培养基配方为:5 g/L可溶性淀粉,1 g/L酵母粉,1.5 g/L KH2PO4,4.2 g/L Na2HPO4 x 12H2O,3.4 g/LNaCl,1 g/L MgSO4 x 7H2O,0.76 g/L EDTA,1 mL/L微量元素,0.5 g/L Na2S·9H2O,0.5 g/L Cysteine HCl,1 mg/L 刃天青,调pH为7.0,煮沸冲氮气,除去氧气后,培养基在无氧条件下装入厌氧瓶灭菌,微量元素 1000×配方:FeCl3 2.0 g/L;H3BO3 0.05 g/L;ZnCl2 0.05g/L;CuCl2·2H2O 0.03 g/L;MnCl2·4H2O 0.05g/L;(NH4)2MoO4 0.05g/L;AlKSO4·2H2O0.05g/L,用注射器按照0.5%接种量接种,82℃静止培养24 h,收集细胞;静置培养Thermotoga thermarum DSM 5069 24 h,取30 mL菌液4000 g离心10 min收集细胞;用9.5mL TE缓冲液重悬菌体,加入0.5 mL 10%十二烷基硫酸钠和50 μL20 mg/mL蛋白酶K,混合均匀,37℃保温1 h;加入1.8 mL 5 mol/L NaCl,1.5 mL 十六烷基三乙基溴化铵/NaCl,混匀,65℃温育20 min;加入等体积氯仿/异戊醇,混匀,6000 g离心10 min;为防止剪切力造成基因组DNA断裂,用粗口吸管将上清转入另一离心管中,加入等体积酚/氯仿/异戊醇混匀,6000 g离心10 min;另一离心管中,加入0.6倍体积异丙醇,轻轻晃动至白色丝状DNA沉淀清晰可见;用吸管将DNA缠绕其上,在70%酒精中清洗,用无菌牙签将DNA从吸管上刮下,转入1.5 mL离心管中;室温下风干,加500 μL TE 缓冲液溶解;取50 μL用核酸蛋白检测仪检测DNA浓度;按照已知的Thermotoga thermarum DSM 5069极耐热阿拉伯呋喃糖苷酶基因WP 013932416.1设计引物,并去除终止密码子;以提取的Thermotoga thermarum DSM 5069的基因组DNA为模板,用合成的引物P5: ATGCCATGGCTTACGAAATCAGTGTGAATC;P6:CCGCTCGAGTGATCTTTCTACTTCTATCAC进行PCR扩增,扩增的条件是94℃,3 min;30次循环,每次循环流程为94℃,30 s;58℃,30 s;72℃,1 min30s;72℃,5 min;反应停止,4℃保温;通过凝胶回收试剂盒对 PCR 扩增产物进行纯化,得到Thermotoga thermarum DSM 5069极耐热阿拉伯呋喃糖苷酶基因;得到Thermotoga thermarum DSM 5069极耐热阿拉伯呋喃糖苷酶基因和pET-28a分别用Nco I和Xho I进行双酶切,并分别割胶回收,浓缩后16℃连接过夜,将连接产物转化大肠杆菌Top10F’感受态细胞,筛选阳性克隆,进行序列分析;挑选序列正确的克隆提取质粒,获得含有极耐热糖苷酶基因的重组质粒pET-28a-Arf;将重组质粒pET-28a-Arf转化大肠杆菌BL21DE3 宿主菌,在含有Kan50 μg/mL的LB平板上经过37℃培养过夜,所述LB平板配方为:胰蛋白胨 10 g/L,酵母提取物 5 g/L,NaCl 5 g/L,琼脂 15 g/L;挑转化子到200 mL 50 μg/mL Kan的LB培养基中,37℃,200 rpm振荡培养至OD600为0.6时,加入终浓度为0.01 mM 异丙基β-D-硫代吡喃半乳糖苷诱导剂,30℃诱导培养8 h,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13000 rpm离心15 min,收集菌体,去上清加入无菌水,超声波破碎细胞,随后70℃热处理30 min,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13000rpm离心15 min,上清即为重组极耐热阿拉伯呋喃糖苷酶的纯酶;
所述β-木糖苷酶为来源于Thermotoga petrophila DSM13995 β-木糖苷酶TpeXyl;具体制备方法为:按照已知的Thermotoga petrophila极耐热β-葡萄糖苷酶基因Tpe_0848设计引物,以提取的Thermotoga petrophila的基因组DNA为模板,用合成的引物P7:CATGCCATGGAACTGTACAGGGATCCTTCG;P8:CCGCTCGAGCTCCTCGCAGGCTTCCGTGAA进行PCR扩增,扩增的条件是95℃,3 min;30次循环,每次循环流程为94℃,30 s;58℃,30 s;72℃,1min30s;72℃,10 min;反应停止,4℃保温;通过凝胶回收试剂盒对 PCR 扩增产物进行纯化,得到Thermotoga petrophila极耐热β-葡萄糖苷酶基因;得到Thermotoga petrophila极耐热β-葡萄糖苷酶基因和pET-20b分别用Nde I和Xho I进行双酶切,并分别割胶回收,浓缩后16℃连接过夜,将连接产物转化大肠杆菌Top10F’感受态细胞,转化产物涂布到卡那霉素至终浓度50 mg/L的LB固体培养基上37℃过夜培养,接种几个单菌落到卡那霉素至终浓度50 mg/L的LB液体培养基中培养8-10小时后,收集菌体提取质粒,酶切验证去除空载质粒,将重组质粒进行核酸序列测定,得到正确的重组表达载体pET28a-xyl;将重组质粒pET28a-xyl转化大肠杆菌BL21DE3宿主菌,在含有50 μg/mL kana的LB平板上经过37℃培养过夜,所述LB平板配方为:胰蛋白胨 10 g/L,酵母提取物 5 g/L,NaCl 5 g/L,琼脂 15 g/L;挑转化子到200 mL 100 μg/mL Amp的LB培养基中,37℃,200 rpm振荡培养至OD600为0.6时,加入终浓度为0.5 mM 异丙基β-D-硫代吡喃半乳糖苷诱导剂,30℃诱导培养8 h,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13000 rpm离心15 min,收集菌体,去上清加入无菌水,超声波破碎细胞,随后70℃热处理30 min,用高速冷冻离心机将培养液在4℃下,以13000 rpm离心15 min,上清即为重组极耐热β-木糖苷的纯酶。