[发明专利]一种DC-CTL细胞的诱导活化试剂盒及其应用方法在审

专利信息
申请号: 201910100720.8 申请日: 2019-01-31
公开(公告)号: CN109825475A 公开(公告)日: 2019-05-31
发明(设计)人: 杨光 申请(专利权)人: 苏州明基医院有限公司
主分类号: C12N5/0783 分类号: C12N5/0783;C12N5/0784
代理公司: 暂无信息 代理人: 暂无信息
地址: 215011 江*** 国省代码: 江苏;32
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摘要:
搜索关键词: 试剂瓶 内置 激活液 诱导活化试剂盒 调制 固定孔 淋巴细胞分离液 无血清培养液 分体式结构 盒体内部 清洗消毒 海绵托 混合液 试剂盒 盒盖 盒体 均一 染菌 海绵 应用 细胞
【权利要求书】:

1.一种DC-CTL细胞的诱导活化试剂盒,包括带盒盖和盒体,其特征在于:所述盒体内部设有一个海绵托,该海绵拖上设有六个固定孔,该六个固定孔内分别放置有内容调制CTL细胞因子激活液IL-2的试剂瓶,内容调制CTL细胞因子激活液IFN-γ的试剂瓶,内容调制DC细胞因子激活液IL-4和GM-CSF混合液的试剂瓶,内容调制DC细胞因子激活液TNF-α的试剂瓶,内容淋巴细胞分离液的试剂瓶,以及内容无血清培养液的试剂瓶。

2.根据权利要求1所述的DC-CTL细胞的诱导活化试剂盒,其特征在于:IL-2的浓度为300-1200IU/ml,IFN-γ浓度为400-1600U/ml,IL-4和GM-CSF混合液中IL-4的浓度为50-300ng/ml以及GM-CSF浓度为600-1500U/ml,TNF-α的浓度为300-1200U/ml。

3.根据权利要求2所述的DC-CTL细胞的诱导活化试剂盒,其特征在于:IL-4和GM-CSF混合液中IL-4的浓度为100ng/ml以及GM-CSF浓度为1000U/mlU/ml。

4.根据权利要求2所述的DC-CTL细胞的诱导活化试剂盒,其特征在于:TNF-α的浓度为500U/ml。

5.根据权利要求2所述的DC-CTL细胞的诱导活化试剂盒,其特征在于:IFN-γ浓度为1000U/ml。

6.根据权利要求2所述的DC-CTL细胞的诱导活化试剂盒,其特征在于:IL-2的浓度为500IU/ml。

7.一种DC-CTL细胞的诱导活化试剂盒的应用方法,用于DC-CTL细胞的诱导活化试剂盒,该试剂盒包括调制CTL细胞因子激活液IL-2,调制CTL细胞因子激活液IFN-γ,调制DC细胞因子激活液IL-4和GM-CSF混合液,调制DC细胞因子激活液TNF-α,淋巴细胞分离液,以及无血清培养液,其特征在于,包括如下步骤:

单采机采集外周血单个核细胞1×109-3×109

血液预处理:将所采集50ml外周血单个核细胞,置于1支50ml的离心管(A管)中,离心A管(400-1200g,8-30min),上清转移至50ml离心管待处理备用,A管下部的细胞作ficoll分离PBMC(外周血单核细胞)用;

细胞的分离:血液预处理获得的A管下层细胞用生理盐水1:1稀释,混匀,将40ml淋巴细胞分离液ficoll等量均分放入2支50ml刻度离心管(D管和E管)。将A管中已稀释的细胞悬液等量均分沿管壁缓慢匀速加入D管和E管。滴加过程中注意用力均匀,避免破坏ficoll-白细胞界面的完整性,离心D管和E管(300-1200g,10-35min,离心机升降速调到最慢),离心后,管内液体分为三层,移液管弃去上层约15ml液体后吸取上、中层界面处白色云雾层狭窄带(即所需PBMC,约5ml)放入H管,生理盐水洗2次(600g,8min)后弃上清,每管40ml无血清细胞培养液重悬细胞分离所获得的PBMC;

接种细胞:将200ml-600ml PBMC细胞悬液分别加入细胞培养瓶T175cm2,置饱和湿度、37℃、3.0%-10.0%CO2培养,2小时后,将细胞培养瓶中悬液的取出,磁珠分选获得CD8+T淋巴细胞,冻存为T细胞;其中的贴壁细胞加入50ml/瓶培养液以及50ul DC细胞诱导因子50-300ng/ml IL-4和600-1500U/ml GM-CSF混合液,用于DC细胞诱导培养;

培养至第4天,向DC细胞培养瓶中加入10ul DC细胞诱导因子50-300ng/ml IL-4和600-1500U/ml GM-CSF混合液;

培养至第6天,加入肿瘤抗原5ul;

培养至第7天,加入10ul DC细胞诱导因子TNF-α(300-1200U/ml);

第8天,复苏T细胞,将成熟的DC细胞平均分成3份,2份用于冻存,1份与复苏的T细胞共培养,加入活化液300-1200IU/ml IL2、400-1600U/ml IFN-γ诱导肿瘤抗原特异性DC-CTL,并取样进行DC标记检测;

第9天,复苏1份DC细胞加入DC-CTL,同时加入活化液300-1200IU/ml IL2、400-1600U/ml IFN-γ对DC-CTL进行培养;

第10天,复苏1份DC细胞加入DC-CTL,同时加入活化液300-1200IU/ml IL2、400-1600U/ml IFN-γ对DC-CTL进行培养;

第11天,将DC-CTL加入已包被细胞培养瓶,对DC-CTL进行扩增;

第13天,加入活化液300-1200IU/ml IL2、400-1600U/ml IFN-γ及细胞培养液对DC-CTL进行培养;

第14天,详细观察细胞生长状态后,随机均匀抽样5ml,台盼蓝染色法计数活细胞、死细胞总数量,同时取样做淋巴细胞表面标记检测;并确认细胞悬液细菌、真菌涂片、支原体及内毒素检测为阴性后,回输DC-CTL及DC,收集细胞约4000ml,离心(1500rpm,8min),洗液(含有0.2%人白蛋白的注射用生理盐水)洗涤(1500rpm,8min)2次,洗液按照500ml生理盐水、50万IU的IL-2、5ml 20%人血清白蛋白的配比,重悬细胞,将其装入细胞回输袋用热合机将管口热合封闭,并留样封存。

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