[发明专利]一种诱导汗腺功能性修复的方法在审
申请号: | 201910895337.6 | 申请日: | 2019-09-20 |
公开(公告)号: | CN110684802A | 公开(公告)日: | 2020-01-14 |
发明(设计)人: | 孙晓艳;陈润开;付小兵;黄瑾 | 申请(专利权)人: | 中国人民解放军总医院 |
主分类号: | C12N15/867 | 分类号: | C12N15/867;C12N15/90;C12N15/12;C12N5/10 |
代理公司: | 11319 北京润泽恒知识产权代理有限公司 | 代理人: | 莎日娜 |
地址: | 100853*** | 国省代码: | 北京;11 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 汗腺 表皮角质细胞 强力霉素 原基 质粒 诱导 基底层 基质胶 慢病毒 培养基培养细胞 特异性培养基 功能性修复 培养基培养 启动子序列 基因水平 生理功能 细胞形成 组织结构 细胞株 重编程 构建 支架 转染 修饰 种质 体内 细胞 修复 移植 再生 基因 应用 联合 | ||
1.一种诱导汗腺功能性修复的方法,其特征在于,包括以下步骤:
设计EDA启动子序列,构建pGLV-H1-GFP-EDA sgRNA质粒;
获取pHAGE TRE dCas9-VP64质粒;
利用慢病毒分别对pGLV-H1-GFP-EDA sgRNA质粒和pHAGE TRE dCas9-VP64质粒进行包装;
获取基底层表皮角质细胞;
利用慢病毒包装的pGLV-H1-GFP-EDA sgRNA质粒及慢病毒包装的pHAGE-TRE-dCas9-VP64质粒依次转染所述表皮角质细胞,并进行EDA基因鉴定,获得稳定过表达EDA基因的细胞株;
利用具有强力霉素的汗腺培养基培养所述细胞株,诱导其体外重编程为汗腺样细胞;
在基质胶环境下,利用具有强力霉素的汗腺培养基培养所述汗腺样细胞,诱导形成类汗腺原基;
将所述类汗腺原基移植至汗腺丧失区,并利用强力霉素诱导形成再生汗腺。
2.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述启动子序列为:
F-5′-ACCCGTTCCTGCGCGACAG-3′,
R-5′-TCATTCCCTCGGCGGGCCGA-3′。
3.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述具有强力霉素的培养基,包括DMEM/F12、Gltamax、Hepes、B27、EGF和bFGF。
4.根据权利要求3所述的方法,其特征在于,所述Gltamax、Hepes和B27的体积分数均为1%,EGF的浓度为50ng/mL,bFGF的浓度为20ng/mL。
5.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述在基质胶环境下,利用具有强力霉素的培养基,包括:
将浓度为10mg/mL下基质胶与密度为2.5×105/mL的汗腺样细胞悬液等体积混匀后铺板,待基质胶凝固后加入含强力霉素的汗腺培养基进行培养,得到类汗腺原基。
6.根据权利要求5所述的方法,其特征在于,所述汗腺培养基中强力霉素的浓度为10ug/mL。
7.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述利用慢病毒包装的pGLV-H1-GFP-EDAsgRNA质粒及慢病毒包装的pHAGE-TRE-dCas9-VP64质粒依次转染所述表皮角质细胞,并进行EDA基因鉴定,获得稳定过表达EDA基因的细胞株,包括:
利用聚凝胺对所述表皮角质细胞进行预处理;
采用Lipo2000作为转染试剂,利用pMD2G和PsPAX作为包装载体,将pGLV-H1-GFP-EDAsgRNA质粒与包装载体混合后,转入人肾上皮细胞系239T细胞中进行第一次病毒包装,收集第一次包装后的病毒液,将病毒液转入预处理后的表皮角质细胞中进行第一次转染,将第一次转染后的表皮角质细胞换液至含HKGS的EpiLife培养基中进行传代培养,后通过细胞流式分选,获得GFP表达强阳性的细胞亚群;
利用聚凝胺对所述GFP表达强阳性的细胞亚群进行预处理;
采用Lipo2000作为转染试剂,利用pMD2G和PsPAX作为包装载体,将pHAGE-TRE-dCas9-VP64质粒与包装载体混合后,转入人肾上皮细胞系293T细胞中进行第二次病毒包装,然后收集第二次包装后的病毒液,将病毒液转入所述GFP表达强阳性的细胞亚群进行第二转染;并通过抗生素G418进行阳性细胞筛选;
将G418筛选阳性的细胞亚群进行EDA基因鉴定,获得稳定过表达EDA基因的细胞株。
8.根据权利要求7所述的方法,其特征在于,所述预处理后的表皮角质细胞的细胞融合度为40%,所述预处理后的GFP表达强阳性的细胞亚群的细胞融合度为40%。
9.根据权利要求7所述的方法,其特征在于,所述包装载体中,pMD2G和PsPAX的质量比为1:3。
10.根据权利要求1所述的方法,其特征在于,所述获取基底层表皮角质细胞,包括:
取新鲜包皮组织,利用医用酒精进行消毒,将消毒后的包皮组织除去皮下部分,并用含有10%青霉素/链霉素混合液的PBS反复冲洗,随后剪成1cm×1cm×2mm大小组织块,加入0.2%dispase II溶液,浸没组织,4℃消化过夜,再将表皮层与真皮层分离,剪碎,加入0.25%的胰蛋白酶/EDTA,37℃消化10min,加入含10%胎牛血清的DMEM终止消化,100目滤网过滤细胞悬液,收集滤过的细胞悬液于离心管中,1000rmp,离心5min,弃去上清液,加入含1%HKGS的EpiLife培养基重悬细胞,在37℃、5%CO2的环境下进行孵育过夜,再更换培养基进行传代培养,即得到基底层表皮角质细胞。
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