[发明专利]干细胞活性因子及其冻干粉剂在审
申请号: | 202010936703.0 | 申请日: | 2020-09-08 |
公开(公告)号: | CN111973547A | 公开(公告)日: | 2020-11-24 |
发明(设计)人: | 陈清法;毛文哲;杨璐 | 申请(专利权)人: | 深圳市先康达生物科技有限公司 |
主分类号: | A61K8/99 | 分类号: | A61K8/99;A61K8/64;A61K8/73;A61K8/34;A61K8/02;A61Q19/00;A61Q19/08 |
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地址: | 518000 广东省深圳市宝安区*** | 国省代码: | 广东;44 |
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摘要: | |||
搜索关键词: | 干细胞 活性 因子 及其 粉剂 | ||
1.干细胞活性因子及其冻干粉剂,其特征在于:包括如下步骤:
干细胞活性因子的提取:
提取产房中剥离新生胎儿后的脐带组织放入脐带运输液,且经4~6°C环境下24~36h内冷藏后提取脐带间充质干细胞进行培养;
当细胞融合度达65~85%时,用生理盐水轻轻冲洗培养瓶细胞1~3次,添加2~6ml消化液,室温放置1~3min,镜下观察细胞接近球形,轻轻拍打瓶壁,中止消化,然后转移至离心管混匀,取样计数,按照6000~8000个细胞/cm²进行传代,2~3天细胞密度达70~80%时,反复以上操作,以获得足够量的间充质干细胞,采用P3~P5代细胞制备;
当细胞活率达80~90%以上时,流式检测标志物合格;
细胞培养至最旺盛时,收集第一次上清至离心管,0.22~0.30μm滤膜过滤上清除菌,用生理盐水清洗2~4次培养瓶,弃去,然后采用细胞饥饿法加入10~15ml生理盐水/T225培养瓶继续培养12~24小时,待细胞变圆,吹打混匀后移至离心管,采用超声破碎仪破碎细胞后离心1400~1600r/min,离心4~6min,收集第二次上清,经0.22~0.30μm滤膜过滤除菌;其中所述生理盐水中添加了0.1~0.2mmol/L浓度的枸橼酸钠;
将上述步骤提取的第一次上清和第二次上清混合,采用截留分子量为10KD的纯化超滤系统浓缩,即得干细胞活性因子浓缩液;
(二)冻干粉剂的制备:
A、将上述步骤中制备获得的干细胞活性因子浓缩液,投入反应釜中备用;
B、选取海藻糖2~6份、金桔糖1~4份、甘氨酸2~7份、精氨酸2~6份、氨基乙酸1~4份、甘露醇6~11份、叔丁醇4~12份、蜂蜜12~22份,按比例混合,用振荡器混匀,制成悬液;
C、将上述步骤制备的悬液盛入冷冻盘中,随后放入3~5°C的冰箱中平衡45~60min后,再控温在-30~-25°C冷冻60~80min,然后控温在-80~-60°C冷冻60~90min;
D、将上述步骤中冷冻后的悬液,按4~12份放入反应釜中与干细胞活性因子浓缩液进行混合,然后将混合后的混合液置入真空容器中,借助真空系统将该真空容器内的压力降到三相点以下,同时通过加热模块使真空容器内的温度达到30°C~150°C,使混合液内的水分逐渐蒸发,直至干燥至水分含量为0%~5%,获得片剂;
E、将上述步骤获得的片剂粉碎成50目~200目的粉末,然后压塞密封,即得冻干粉剂。
2.根据权利要求1所述的干细胞活性因子及其冻干粉剂,其特征在于:所述步骤一中流式检测标志物结果中显示细胞具有成脂、成骨、成软骨分化潜能。
3.根据权利要求1所述的干细胞活性因子及其冻干粉剂,其特征在于:所述步骤一中超声破碎仪破碎细胞时,其程序为:4~6°C,500w,超声2~3秒,间隔8秒,86个循环。
4.根据权利要求1所述的干细胞活性因子及其冻干粉剂,其特征在于:所述步骤一中脐带选取后,需要对其进行清洗,清洗后的脐带组织剪成4~5cm的小段,清洗一次,然后在清洗液中剥离脐带组织中的血管和表皮,然后将华通氏胶撕成小块,清洗后于50ml离心管中剪碎,然后将组织碎块转移至125~150ml储液瓶中,加入1~2倍体积的组织消化液,于37~40°C振荡培养箱中消化1.5~3小时,直至无成形组织块,进行细胞培养。
5.根据权利要求4所述的干细胞活性因子及其冻干粉剂,其特征在于:所述步骤一中的清洗液选用0.9%的生理盐水,所述培养基含有酚红。
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